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,单击此处编辑母版标题样式,*,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,实验十七,(,2,)烟草原生质体融合,一、原理,PEG,带微弱极性的负电荷,能与水、蛋白质和碳水化合物等具有正电荷基团的分子形成氢键。在邻近原生质体表面之间起着分子桥的作用,加上,PEG,渗透吸水的作用,使原生质体相互接触在一起。,在洗涤过程中,直接或间接与质膜结合的,PEG,分子从原生质体表面洗脱,并随着,pH,的降低,导致膜电荷的不平衡和发生重新分布;在原生质体 吸水过程中,发生原生质体融合。,1,二、实验目的,学习植物原生质体融合的方法,为进行体细胞杂交,培育体细胞杂种和胞质杂种打下基础。,三、实验材料和用具,1,、材料:烟草,BY2,愈伤组织,烟草组培苗,2,、用具,:,过滤器,注射筒,不锈钢网筛(,=54m,),漏斗,三角瓶,滴管,,10ml,刻度离心管,血球记数板。,2,四、实验步骤,1,、配制酶液,各组(,2,人)配制下列酶液各,10ml,,,4000rpm,离心,6min,后过滤灭菌于无菌三角瓶中。,CPW,培养基,+0.4mol/L,甘露醇,+,2%,纤维素酶,+,0.5%,离析酶,3,2,3,周龄愈伤组织和叶片各约,1g,和,0.5g,,叶片剪成细条,加入到酶液中、用镊子分散愈伤组织,黑暗、,25,酶解,56,小时,间歇轻轻摇动。,2,、,BY2,愈伤组织和叶肉原生质体分离,4,3,、过滤和离心洗涤原生质体,过滤,800rpm,离心,3min,弃上清液,加入,3ml CPW,培养基,用滴管重新悬浮原生质体,800rpm,离心,3min,弃上清液,重新悬浮在,0.5ml CPW,溶液中,5,4,、原生质体融合,(,1,)调整密度:用血球板计数后,将原生质体的密度调整为,10,6,个原生质体,/ml,。,(,2,)配置,PEG,融合液(无菌下),PEG,溶液:甘氨酸缓冲液:,DMSO=8,:,1,:,1,(,3,)将愈伤组织原生质体和叶肉原生质体等体积混合。,6,(,4,)原生质体融合步骤,取,0.2ml,混合原生质体悬浮液,加入,0.2ml,高钙高,pH PEG,融合液,静置,10min,5min,内缓慢加入,5ml W,5,稀释液,轻轻吸打混匀,静置,30min,800rpm,离心,3min,,弃上清夜,重新悬浮在,0.5ml W,5,,,静置,10min,7,(,5,)融合原生质体的观察,吸,1,滴融合的原生质体悬浮液于血球计数板上,在显微镜下融合的原生质体,统计融合率。,融合原生质体的特征:,A,:异源融合;,B,:同源融合,融合率,=,融合的原生质体数,/,观察的原生质体数,8,准备下次实验的试剂(各,100ml,):,(,1,),2CTAB,提取缓冲液:,100mM Tris-HCl,(,pH8.0,),,2,(,w/v,),CTAB,,,1.4M NaCl,,,40mM,-,巯基乙醇,,20mM EDTA,(,2,),TE,缓冲液:,10mM Tris-HCl (pH7.4), 1mM EDTA,。,(,3,),50,TAE,电极缓冲液:称取,24.2gTris,溶解于适量蒸馏水中,加入,5.7ml,冰乙酸,,10ml 0.5mol/L EDTA(pH8.0),溶液,,定容到,100ml,。,(,4,)溶液,I:50 mmol/L,葡萄糖,,25,mmol/L Tris.HCl(pH8.0),10 mmol/L EDTA(pH8.0),(,5,)溶液,III,:,60 ml 5mol/L,乙酸钾, 11.5 ml 11.5,冰乙酸, 28.5 ml,无菌水,(,6,)分别配制,0.4 mol/L NaOH,和2,SDS,溶液(,各50,ml,),9,
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