药理学实验课件

单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,*,药理学实验,实验一,药理学实验的基础知识,药理学实验实验一,1,考核方法,一、实验操作考核占,10,小鼠,1.,抓持,2.,灌胃,3.,腹腔注射,4.,皮下注射,家兔：抓持,剂量换算,二、自主探索性设计占总成绩的,60,：,1.,实验准备考核及实验准备程度。占总成绩的,10,2.,实验基本操作的正确程度以及认真程度。占总成绩的,20,2.,平时实验报告的书写以及实验的成功率或者,失败分析,。占总成绩的,30,三、综合设计性实验占,30,：,1.,实验设计前准备及,PPT,制作，占,10%,2.,实验实验报告，占,10%,3.,自主实验操作，占,10%,考核方法一、实验操作考核占10,2,实验具体扣分项目,无故旷课（,-5,分）,上课迟到,2min,（,-2,分）,实验不认真（玩手机、利用电脑娱乐等）（,-1,分）,白大褂不穿（,-1,分）,数据造假（,-5,分）,实验准备不充分，考试成绩,老年,成年,如氯丙嗪对,10,28,周龄小鼠引起血糖升高，对老年小鼠引起血糖降低,又如麦角新碱对,5,6,周龄的雄性大鼠有镇痛效果，对该龄的雌性大鼠无镇痛效果,实验动物的选择同一品系的实验动物，对同一刺激物反应存在着个体,19,药理实验的基本操作技术,实验动物的编号,实验动物性别的辨别,实验动物的处死法,实验动物的捉持与常用给药方法,实验动物给药量的计算,药理实验的基本操作技术实验动物的编号,20,可用,35,苦味酸溶液（黄色）涂于大鼠、小鼠和兔皮毛不同部位以标号,1.,动物的编号,2,1,3,4,5,6,7,8,9,可用35苦味酸溶液（黄色）涂于大鼠、小鼠和兔皮毛不同部位,21,小鼠（左为雄性，右为雌性）,2.,动物性别的辨别,小鼠（左为雄性，右为雌性）2.动物性别的辨别,22,3.,实验动物的处死法,颈椎脱臼法,常用于小鼠。用左手拇指、食指或镊子用力压住小鼠的后头部，同时用右手抓住鼠尾用力向后上方牵拉，使之颈椎脱臼死亡。,空气栓塞法,常用于兔。用注射器将空气快速注入静脉使动物死亡。,击打法,可用于兔、大鼠和小鼠等。提起动物的尾部，用力敲击动物头部，或用用木锤打击头部，使动物死亡。,断头法,用于小鼠和大鼠。用剪刀将动物头部剪断，由于脊髓离断且大量失血，使动物死亡。,3.实验动物的处死法颈椎脱臼法常用于小鼠。用左手拇指、,23,4.,实验动物的捉持与常用给药方法,4.实验动物的捉持与常用给药方法,24,双手法：右手提鼠尾，放在鼠笼盖或粗糙面上，向后方轻拉鼠尾，使小鼠前肢固定在粗糙面上。迅速用左手拇指和食指捏其双耳间颈背部皮肤，无名指、小指和掌心夹其背部皮肤和尾部，便可将小鼠牢固捉持,小鼠的捉持,双手法：右手提鼠尾，放在鼠笼盖或粗糙面上，向后方轻拉鼠尾，使,25,单手法：小鼠置于笼盖上，先用左手食指和拇指抓住鼠尾，后手掌尺侧和小指夹住鼠尾，然后左手拇指与食指捏住颈部皮肤,单手法：小鼠置于笼盖上，先用左手食指和拇指抓住鼠尾，后手掌尺,26,大鼠的捉持,捉持和固定方法基本同小鼠，无经验者可戴上防护手套，并应动作轻柔,用右手捉住鼠尾，放在鼠笼盖上，向后轻拉鼠尾；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可,大鼠的捉持捉持和固定方法基本同小鼠，无经验者可戴上防护手套，,27,兔的捉持,用一手抓住家兔的项部皮肤，将兔提起，另一手托其臀部，使兔呈坐式姿势。,兔的捉持用一手抓住家兔的项部皮肤，将兔提起，另一手托其臀部，,28,常用的给药方法,常用的给药方法,29,小鼠的给药方法,灌胃（,ig,）：,将小鼠固定后，使颈部拉直，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角插入口腔，压其头部，使口腔与食道成一直线，沿上腭壁向鼠口腔的后下方轻轻插入食道。如遇阻力，可将针头抽出再插，以免刺破食管或误入气管。一般给药量为,0.10.3ml/10g,体重,小鼠的给药方法灌胃（ig）：将小鼠固定后，使颈部拉直，右手持,30,皮下注射（,sc,）：,常在背部皮下。轻轻捏起背部皮肤，将注射针头刺入皮下，稍稍摆动针头，若容易摆动则表明针尖位于皮下。然后注入药液。一般给药量为,0.050.2ml/10g,体重,皮下注射（sc）：常在背部皮下。轻轻捏起背部皮肤，将注射针头,31,腹腔注射（,ip,）：,左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈,45,角刺入腹腔，进针约,35mm,，一般给药量为,0.10.3ml/10g,体重,腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，,32,大鼠的给药方法,方法基本同小鼠。给药容量一般为：,灌胃,12ml/100g,皮下注射,0.51ml/100g,腹腔注射,0.51ml/100g,肌内注射,0.10.2ml/100g,尾静脉注射,0.20.5ml/100g,大鼠的给药方法方法基本同小鼠。给药容量一般为：,33,兔的给药方法,灌胃法：,将兔置于固定箱内，用开口器插入兔口，使兔舌伸直并固定之。另一人将胃管（可用导尿管代替）从开口器中央孔插入口内，再慢慢插入食管和胃，深,15,18cm,。插管时感觉顺利，动物不挣扎也无呼吸困难出现，表示导尿管在胃内。将导尿管外端插入水中，如有气泡吹出，表示已误入气管内，应拔出重插。如未见气泡出现即证实在胃内。然后将药液注入。灌药量一般为,10ml/kg,体重,兔的给药方法灌胃法：将兔置于固定箱内，用开口器插入兔口，使兔,34,耳缘静脉注射：,将家兔置于固定箱内，沿耳后缘拔去兔毛，用干棉球擦兔耳或用手指轻弹，使耳缘静脉扩张。以手捏在耳根部压住静脉，使其充血，然后进针，见回血后注入药液。推注时如有阻力，局部肿胀变白，表明针头不在血管内，须重新穿刺。注射量一般为,0.22ml,kg,耳缘静脉注射：将家兔置于固定箱内，沿耳后缘拔去兔毛，用干棉球,35,5.,实验动物给药量的计算,药物浓度一般用百分浓度（,%,）（,w/v,）,给药剂量一般按,mg/kg(,或,g/kg),计算。为方便，大鼠和豚鼠可按每,100g,计算，小鼠可按每,10g,计算,给药,剂量,=,药物,浓度,给药,体积,已知动物体重，给药剂量、药物浓度和给药体积（,ml,）中任意一个都可由其余两个推算而得,5.实验动物给药量的计算药物浓度一般用百分浓度（%）（w/,36,例题,小鼠体重,22g,，腹腔注射盐酸吗啡,10mg/kg,药物浓度为,0.1%,，应注射多少毫升,?,药物浓度：,0.1%=0.1g/100ml=100mg/100ml=1mg/ml,给药剂量：,10mg/kg,22g,小鼠药量：,10mg/kg 0.022kg,0.22mg,0.22mg 1mg/ml=0.22ml,例题,37,溶液,PH,值,对某些药物吸收速率的影响,实验二,溶液PH值实验二,38,【,目的,】,通过对不同,PH,值的阿托品溶液滴眼后,作用快慢的比较，了解溶液的,PH,值对弱碱（或弱酸）性药物穿透生物膜速率的的影响,【,动物,】,家兔,1,只,【,药品,】,1%,硫酸阿托品（,PH,9,）,1%,硫酸阿托品（,PH,5,）,【,器材,】,兔固定箱，滴管，测瞳尺，手电筒,【目的】通过对不同PH值的阿托品溶液滴眼后,39,阿托品,可阻断瞳孔扩约肌的,M,受体，使扩约肌松弛，导致瞳孔散大,M-,胆碱受体激动剂,瞳孔括约肌收缩，引起缩瞳,阿托品可阻断瞳孔扩约肌的M 受体，使扩约肌松弛，导致瞳孔,40,阿托品是一个生物碱（弱碱性）,B,H,+,BH,+,根据,Handerson-Hasselbalch,公式,BH,+,B,10,PKa PH,阿托品是一个生物碱（弱碱性）BH+,41,方法,1.,取兔,1,只，置兔固定箱内，给药前于适度的光照下，用测瞳尺测量两眼瞳孔的大小（以,mm,表示）。另用手电筒光照试验对光反射，即用闪射光照射兔眼，如瞳孔随光照而缩小，即为对光反射阳性，否则为阴性,方法1.取兔1只，置兔固定箱内，给药前于适度的光照下，用,42,给药前,1min 2min 3min 4min 5min,瞳孔直径（,mm,）,2.,剪去兔眼的睫毛，在其左右眼结膜囊内分别滴药，观察两眼瞳孔变化，用直尺测量直径并测对光反射，直至两眼瞳孔不在扩大，对光反射消失，结果记入下表,对光反射,给药前 1min 2min 3min 4,43,注意事项,1,动物瞳孔大小可因光强不同而变化，故比较给药前后瞳孔变化，要在同一光强条件下比较,2,滴药液时，将兔下眼睑拉开，使其成杯状，并在结膜囊内保留,30,秒，再将手放开,3,测瞳时不能刺激角膜，测量角度须前后一致，否则将影响结果的精准度,4,观察对光反射只能用闪射灯光,5.,两药液的作用差异在滴药后,2,5min,最明显,注意事项1动物瞳孔大小可因光强不同而变化，故比较给药前后瞳,44,经常不断地学习,你就什么都知道。你知道得越多,你就越有力量,Study Constantly,And You Will Know Everything.The More You Know,The More Powerful You Will Be,写在最后,经常不断地学习,你就什么都知道。你知道得越多,你就越有力量写,45,感谢聆听,不足之处请大家批评指导,Please Criticize And Guide The Shortcomings,结束语,讲师：,XXXXXX,XX,年,XX,月,XX,日,感谢聆听结束语讲师：XXXXXX,46,