资源描述
,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,农业生物学实验教学中心,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,植物总,DNA,的提取及琼脂糖凝胶电泳检测,制作人:刘红梅,植物基因组,DNA,的提取,琼脂糖凝胶电泳检测,脱氧核糖核酸,(DNA),、核糖核酸,(RNA),与蛋白质结合在一起以核蛋白(,DNP,)的形式存在。在制备核酸时通常破坏细胞壁及细胞膜来使核蛋白释放出来。,植物总,DNA,包括细胞核,DNA,和细胞核外,DNA,前者存在于细胞核内,后者存在于细胞质中有半自主性复制活性的细胞器内,例如线粒体,DNA(,mtDNA,),和叶绿体,DNA(,ctDNA,),。,背景知识,核酸的存在形式,DNA,为白色类似石棉样的,纤维状物,,,RNA,的纯品呈,白色粉末或结晶,。核酸和核苷酸大都呈酸味。,DNA、RNA,和核苷酸都是,极性化合物,,一般都溶于水,不溶于乙醇、氯仿等有机溶剂,它们的钠盐比游离酸易溶于水。,在酸性溶液中,核酸易水解,中性或弱碱性溶液中较稳定。,核酸的理化性质,细胞破碎 抽提去蛋白质 沉淀核酸,基本过程,机械方法:,超声波处理法、研磨法、匀浆法;,化学试剂法:,用,SDS,处理细胞;,酶解法:,加入溶菌酶或蜗牛酶,破坏细胞壁。,细胞破碎,SDS,法,SDS,是有效的阴离子去垢剂,细胞中,DNA,与蛋白质之间 常借静电引力或配位键结合,SDS,能够破坏这种价键。,CTAB,法,CTAB,是一种阳离子去垢剂,它可以溶解膜与脂膜,使细胞中的,DNA-,蛋白质复合物释放出来,并使蛋白质变性,使,DNA,与蛋白质分离。,DNA,提取,蛋白质,常用苯酚:氯仿:异戊醇(,25,:,24,:,1,)或氯仿:异戊醇(,24,:,1,)抽提。,RNA,常选用,RNase,消化 ,或是用,LiCl,来消除大分子的,RNA,。,酚类物质,提取液中加少量巯基乙醇,选取幼嫩的材料。,多糖,提取液中加,1,PVP,。,DNA,纯化(去杂质),实验材料,新鲜蔬菜叶片,(,去叶脉,),试剂,2CTAB,抽提液,TE,缓冲液,(pH=8.0),氯仿:异戊醇,(24:1),材料与试剂,离心机,水浴锅,研钵,微量移液器,仪器用具,移液器量程的选择,1,取,2g,清洗凉干的新鲜叶片于研钵中,加,1/3,药匙石英砂和,4mL 2,倍的,CTAB,提取液,迅速研磨。,2,将,1mL,研磨液转入,1.5mL,离心管中,置于,65,水浴中保温,20min,,其间颠倒混匀,2,3,次。,破碎细胞,3. 12000r/min,离心,5min,,取上清液,700,L,转到另一离心管中。加入等体积氯仿:异戊醇(,24:1,)混合液,充分颠倒混匀。,12000r/min,,离心,5min,。,抽提去蛋白,4,将上清液移入新的离心管内,加,600L,异丙醇。颠倒混匀,可见,DNA,絮状沉淀。,沉淀核酸,5,12000r/min,,离心,1min,,倒掉上清液,将离心管倒置干燥。,将沉淀回溶于,20L TE,缓冲液待测。,操作步骤,1),选取新鲜材料,研磨迅速彻底,研磨好的材料应与,CTAB,抽提液充分混匀;,2),若提取产物有颜色,可能是材料中含有较多的多酚类物质,添加巯基乙醇(,2,5,),尽可能选取幼嫩的材料;,3,)收集,CTAB,与核酸形成的复合物时不要离心过度,否则沉淀再溶解难;,4,)为了获得具有生物活性的天然核酸,在分离制备过程中必须采用温和的条件,避免过酸过碱、剧烈地搅拌,防止热变性,同时还要避免核酸降解酶类的降解。,注意事项,DNA,分子在高于等电点的,PH,溶液中带负电荷,在电场中向正极移动。在一定电场强度下,,DNA,分子的迁移速度与相对分子质量的对数成反比。,电泳原理,琼脂糖是一种线性多糖聚合物。,浓度越高,孔隙越小,其分辨能力就越强。,琼脂糖浓度,(%),线型,DNA,分子的分离范围,(Kb),0.3,5,60,0.6,1,20,0.7,0.8,10,0.9,0.5,7,1.2,0.9,6,1.5,0.2,3,12.0,0.1,2,仪器和试剂,仪器,电泳仪,电泳槽,灌胶模具等,Tris,-,硼酸(,TBE,),Tris,-,乙酸(,TAE,),Tris,-,磷酸(,TPE,),常用电泳缓冲液,电泳指示剂溴酚兰在碱性液体中呈紫兰色,一般与蔗糖、甘油或聚蔗糖,400,组成上样缓冲液。,作用:,增加样品比重,以确保,DNA,均匀沉入加样孔内。,形成肉眼可见的指示带,预测核酸电泳的速度和位置。,使样品呈色,使加样操作更方便。,上样缓冲液,溴化乙锭(,EB,),是一种荧光染料,,EB,分子可嵌入核酸双链的碱基对之间,在紫外线激发下,发出红色荧光。其荧光强度与,DNA,的含量成正比。据此可粗略估计样品,DNA,浓度。,琼脂糖凝胶,EB,染色,肉眼可见核酸电泳带,其,DNA,量一般,5ng,。,核酸染色剂,注意事项:,EB,是致癌物质,切勿用手接触,更不要污染环境。,DNA,分子量标准,不同种类,DNA Marker,1.,凝胶制备,制备,0.8%,琼脂糖凝胶。称取适量琼脂糖加入,20mL 0.5TBE,,加热至琼脂糖全部熔化,冷却至,50-60,时,加入,EB,至终浓度,g/mL,。缓慢倒入胶板,待胶凝固后拔出梳子。,2.,加样,取,10,l DNA,样液与,2,l,上样,buffeer,混匀,用微量移液器小心加入样品槽。,3.,电泳,接通电源,切记靠近加样孔的一端为负,电压为,15V/cm,(长度以两个电极之间的距离计算),待溴酚兰移动到一定位置,停止电泳。,4.,观察拍照,四、操作步骤,紫外仪上观察电泳带及其位置。,绘制核酸电泳示意图。,作业,1.,结合原理,简述,CTAB,法分离提取植物总,DNA,的基本过程。,2.,为了获得高质量的植物总,DNA,,在分离提取过程中应注意那些问题?,What,?!,How?!,思考,
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