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,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,植物生理学实验,C2016 C2020,1,36,学时，,2,学分。,除第,1,个实验自学外，第,2,周开始安排,8,个实验，每个实验,8.5,分，合计,8.5,8+2=70,（平时实验及实验报告成绩）。,期末考试成绩,30,分。,2,1,新鲜和萎蔫植物组织,含水量,和组织,水势,的比较,2,光和,K,+,对,气孔,运动的调节,3,硝酸还原酶,（,NR,）,活性,的测定,4,叶绿体色素,的测定和分析,5,萌动,种子呼吸,对温度的响应,6,快速测定,种子活力,的方法和比较,7,植物,生长激素,作用的部位和浓度效应比较分析、激素检测方法,8,逆境,胁迫下植物,细胞膜透性,及脯氨酸含量的变化分析,植物生理学实验安排,3,一,.,实验题目二,.,实验目的及原理三,.,实验步骤,四,.,结果与分析,五,.,注意事项,(,自己体会）六,.,思考题,植物生理学实验报告,(,独立完成，交学委,),4,在老师指导下，合理、安全地使用实验仪器；,实验前，分组查看器皿；,实验后，彻底清洗器皿，按实验前摆放归位；,一旦损坏物品，及时登记；,严禁将任何器皿插入洗液瓶中；,每次实验结束后，由班长安排,3-4,位同学清洁打扫。,注意事项,5,一,),植物组织,含水量,的测定二,),植物组织,水势,的测定,实验一 新鲜和萎蔫植物组织含水量和组织水势的比较,6,一,),植物组织含水量的测定,1.,实验目的,1),比较植物组织,某种成分单位干重,水平上的含量。,2),了解植物组织含水量与组织水势的关系；,7,2.,实验原理,水遇热蒸发为水蒸汽，可以用,烘干法,来测定植物组 织中的含水量。,植物组织含水量的表示方法，常以鲜重或干重,%,表 示，有时也以相对含水量,%,表示。,植物组织含水量（,%,）,=,（鲜重,-,干重）,/,鲜重,100,8,材料：,小白菜（新鲜叶片，高温贮藏萎蔫叶片）。,仪器：,打孔器、橡胶垫、称样铝盒、 烘箱、搪瓷盆、棉布手套、天平，等。,3.,材料、仪器设备与试剂,9,1),铝盒干燥、标记、称重：,A,1,、,A,2,，,B,1,、,B,2,;,2),打取叶圆片：,新鲜叶和萎蔫叶各打约,60,片叶圆片,（注意避开大的叶脉），,放至铝盒中，混合均匀。每个铝盒各放,30,片，,2,次重复；,3),称鲜重,:,铝盒,+,叶圆片；,4),烘干：,105,，,2h,左右。（,打开盖子，盖子放,各自,铝盒下面,）；,5),称干重：,取出室温，称重（铝盒,+,叶圆片）。,4.,实验步骤,10,含水量（,%,）,=,（,W,1,-W,2,）,/ (W,1,-,W,0,）,100,5.,结果与分析,11,二,),植物组织水势的测定,1.,实验目的,1),因陋就简测定植物组织水势；,2),与含水量进行比较，分析二者关系。,12,将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中，,植物组织的水势,溶液的渗透势，组织吸水而使溶液浓度变大；,植物组织的水势,溶液的渗透势，组织水分外流而使溶液浓度变小；,植物组织的水势,=,溶液的渗透势，外部溶液浓度不变。,当某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时，该浓度溶液为此植物组织的等渗溶液，植物组织地水势等于该溶液的渗透势。,2.,实验原理,在渗透系统中，水总是从水势高处流向水势低处。,13,用溶液的渗透势,(,),代表植物水势,(,w,),。,w,-,i,CRT,（单位：兆帕，,MPa,）,i,：为解离系数（蔗糖,=1.00,；,CaCl,2,=2.60,；,NaCl=1.80,）,C,：为等渗浓度,（,mol/L),R,：为气体常数,0.008314 L,MPa,/,（,mol,K,）,T,：为绝对温度（,273+,摄氏温度）,14,材料：,小白菜（新鲜叶组和萎蔫叶组）；,仪器设备,：注射针头、打孔器、试管，等；,试剂：,1 M,蔗糖，纯水，甲烯蓝粉。,3.,材料、仪器设备与试剂,15,1,）打取叶圆片,4.,实验步骤,新鲜叶和萎蔫叶各打约,60,片叶圆片,（注意避开大的叶脉），,放至铝盒中，混合均匀。,2,）配制蔗糖溶液梯度,把试管分成两组，每组大试管和小试管各,6,支；在每一组中，用,6,支大试管分别配制,10ml,不同浓度的蔗糖溶液,(mol/L),：,0.05,、,0.1,、,0.2,、,0.3,、,0.4,、,0.5,，（用浓度为,1mol/L,的蔗糖溶液稀释）；然后，分别取,2ml,放入对应的小试管中。,（注意：试管刻度不准确，用移液管来量取。）,16,3,） 浸泡,每支小试管中分别放入,10,个叶圆片，充分浸泡,30,分钟，其间摇晃几次。,4,）染色,浸泡完毕后，向小试管中投入尽量少的甲烯蓝，染色。,17,5,）液流操作与观察,用针头吸取小试管中的溶液少许，插入,对应浓度大试管,溶液的中部，小心的放出少量液流，观察蓝色液流的升降动向，并记录。,蓝色液流上升：,浸过小圆片的蔗糖溶液浓度变小了（即植物组织失水），表明叶片组织的水势高于该蔗糖溶液的渗透势；,蓝色液流下降：,变大；,蓝色液流静止不动：,等渗浓度。,18,轻捏吸管,放入刻度试管,深入溶液中部,挤出小液滴,取出吸管观,察液滴升降,19,实验步骤,1,）打取叶圆片：,新鲜叶和萎蔫叶各打约,60,片叶圆片（注意避开大的叶脉），放至铝盒中，混合均匀。,2,）配制蔗糖溶液梯度：,把试管分成两组，每组大试管和小试管各,6,支；在每一组中，用,6,支大试管分别配制,10ml,不同浓度的蔗糖溶液,(mol/L),：,0.05,、,0.1,、,0.2,、,0.3,、,0.4,、,0.5,；然后，分别取,2ml,放入对应的小试管中。,3,）浸泡,： 每支小试管中分别放入,10,个叶圆片，充分浸泡,30,分钟，其间摇晃几次。,4,）染色,：浸泡完毕后，向小试管中投入尽量少的甲烯蓝，染色。,5,）液流操作与观察,：用针头吸取小试管中的溶液少许，插入对应浓度大试管的中部，小心的放出少量液流，观察蓝色液流的升降动向，并记录。,20,5.,结果分析,w,-,i,CRT,（单位：兆帕，,MPa,）,1.,分别计算新鲜和萎焉叶片的含水量，并进行比较分析。,2.,记录,不同浓度溶液中的液流方向。,3.,计算两组叶片的水势，并结合其含水量比较分析。,蔗糖溶液浓度,(mol, L,-1,),0.05 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5,w,(MPa),新鲜叶,萎蔫叶,21,C = 0.2mol/L,C (0.2+0.3)/2,22,严重萎蔫叶片的,C,可能, 0.5,幼嫩新鲜叶片的,C,可能, 0.05,23,错误结果,24,1),称鲜重前确定铝盒是否干燥干净；,2),拭干叶表水分和泥渍；,3),避开大的叶脉打叶圆片,混合均匀；,4),移液管取溶液和纯水；,5),配制的蔗糖溶液要上下颠倒混匀；,6),润洗移液管和针头（放回原液）；,7),叶圆片浸入液面下；,8),浸泡,30,分钟后再加甲烯蓝染色；,9),尽量少加甲烯蓝；,10),轻压胶管使针筒少量吸入染色溶液；,11),滴入后，停止挤压或放松胶管。,6.,注意事项,25,增加或减少蔗糖溶液中叶圆片数目是否会影响水势测定结果,为什么,?,7.,思考题,26,1.,实验材料准备不足，影响了实验完成。,2.,怀疑铝盒在烘干前有水分，为何不称一下烘干后的铝盒重量呢？可以换算出来正确的鲜重和干重。,3.,试管的刻度不准确，应该用移液管来统一量取。,4.,结合含水量和水势进行比较分析。,存在问题：,27,
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