肿瘤组织库的建立与管理PPT实用版课件

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Tissue ischemia time affects gene and protein expression patterns within minutes following surgical tumor excision.,Biotechniques.,2004;36(6):1030,1037.,2. Maine IP, Varambally S, Shen R, Chinnaiyan M, Rubin MA. Changes in differential gene expression because of warm ischemia time of radical prostatectomy specimens.,Am J Pathol.2002;161(5):1743,1748.,3. Huang J, Qi R, Quackenbush J, Dauway E, Lazaridis E, Yeatman T. Effecs of ischemia on gene expression.,J Surg Res.,2001;99:222,227.,理论基础二、组织收集1.Spruessel A, Stei,8,202下2000r/min离心20分钟。,4、轻轻吸取淡黄色上层血清(血浆)放入1.,优点研究者能获得他们需要的组织样本,能够满足其研究的个性化需求。,DNA分子稳定性较mRNA好,在80环境中保存5年,DNA完整性良好5,方法二RTPCR扩增actin、HHPRT管家基因,分析扩增产物的含量,产物含量相对较少或无产物可判断为不可用样本。,Am J Pathol.,10、弃去上清液保留底部沉淀,血清、血浆及淋巴细胞分装完毕后贴好二维标签。,8、按1:5的比例向淋巴细胞中加入PBS液,混匀洗涤,室温1000r/min离心10min。,缺点不能提供新鲜的、未被冰冻的人体组织,亦不能提供某些有特殊加工需求的组织样本。,同样,组织的大小、采集及加工的方法也不能满足所有研究者的需求。,通过DNA电泳判断组织标本的基因组是否完整。,5ml离心管中,每管200l,共12管(血清6管,血浆6管),做好标记。,HIV感染患者不列为采集对象。,前瞻性收集模式研究者指定需要的组织类型,同时也制定出所需的组织采集、处理及储存方法。,202下2000r/min离心20分钟。,不能满足研究者对组织块的个性化需求。,5mlPBS液吹打洗涤,置入标记好的1.,2004;36(6):10301037.,理论基础,三、组织储存,北京大学季加孚等研究发现手术后1 h内取材的组织经过3年低温保存,90以上的标本仍有清晰的28S和18S RNA条带,提示RNA完整性较好4,DNA分子稳定性较mRNA好,在80环境中保存5年,DNA完整性良好5,4.,季加孚北京大学临床肿瘤学院肿瘤标本库的建设,J,北京大学学报:医学版,,2005,,,37(3),:,329,330,5.,张佳年, 于颖彦, 计骏,.,等,.,低温冻存时间对肿瘤组织生物大分子的影响,J.,诊断学理论与实践,2009,,,V01,8,,,No1,202下2000r/min离心20分钟。理论基础三、组织,9,材料与方法,肿瘤组织库库房,放置液氮罐、冰箱、冰柜等冷冻设备,用于存放标本;分子生物室(中心实验室)用于提取血清、血浆、分离淋巴细胞。,库房设备液氮罐1个(YDS30,沈阳新光), 80立式超低温保存箱2台(DW86L628,青岛海尔),420冰柜1台(BCD130Eb,青岛海尔);联想电脑、条码扫描器、条码打印机1套(BPIP300,德国BRADY)等。,材料与方法肿瘤组织库库房,放置液氮罐、冰箱、冰柜等冷冻设备,,10,库房,库房,11,生物样本库资源信息管理系统,生物样本库资源信息管理系统,12,主要设备,BRADY,条码打印机,液氮罐,海尔,-80,冰箱,主要设备BRADY条码打印机液氮罐海尔-80冰箱,13,患者入院后行生物安全性检查。检测,HIV,以及嗜肝病毒,HBV,及,HCV,感染情况。,HIV,感染患者不列为采集对象。,HBV,及,HCV,感染者需在标本上明确注明。,尊重患者的知情权和隐私权,在向患者及家属介绍标本采集和使用目的,获得患者自愿签署知情同意书后,方可安排标本采集和数据录入。,患者入院后行生物安全性检查。检测HIV以及嗜肝病毒HBV及H,14,组织采集,手术结束后,标本离体30分钟内完成,在临床肿瘤专家的指导下,在不影响病理诊断取材需要的前提下,采集组织样本。,1)标本取材部位肿瘤组织、癌旁组织(癌组织旁1cm)和正常组织(癌组织旁5cm及以外或最远处)。,2)过程使用数码相机拍摄标本外观后,将标本切成小块(直径0.50.5cm,厚度0.5cm),为减少处理时间,标本不应切得太小,然后放入无菌冻存管内,做好标记,记录标本采集的时间及标本的类型。每例病人样本保存35份冻存管标本。每份组织重量原则不低于2g。,3)标本冻存管标记后直接冻存于液氮中,后转移至80冰箱中。标本运送过程中,将其置于冰中保存。,组织采集手术结束后,标本离体30分钟内完成,在临床肿瘤专家的,15,202下2000r/min离心20分钟。,组织标本形式通常为低温冷冻组织或蜡块。,生物样本库资源信息管理系统,每例病人样本保存35份冻存管标本。,产物含量相对较少或无产物,可判断为不可使用标本。,季加孚北京大学临床肿瘤学院肿瘤标本库的建设J北京大学学报:医学版,2005,37(3):329330,6、15ml离心管内先加入3ml淋巴细胞分离液,后加入6ml稀释样品,注意加入样品要缓慢进行,不要冲破液面,影响离心效果。,生物样本库资源信息管理系统,5cm),为减少处理时间,标本不应切得太小,然后放入无菌冻存管内,做好标记,记录标本采集的时间及标本的类型。,10、弃去上清液保留底部沉淀,血清、血浆及淋巴细胞分装完毕后贴好二维标签。,5、新鲜抗凝血(含2%EDTA抗凝)去血浆后,按照1:1比例加入PBS液混匀。,前瞻性收集模式研究者指定需要的组织类型,同时也制定出所需的组织采集、处理及储存方法。,2004;36(6):10301037.,8、按1:5的比例向淋巴细胞中加入PBS液,混匀洗涤,室温1000r/min离心10min。,缺点没有现成的大量的组织标本以及临床资料,因为组织需要前瞻性的去收集。,2002;161(5):17431748.,Maine等人报道,前列腺组织离体1小时内仅有不到1%基因发生了变化2,不能满足研究者对组织块的个性化需求。,2002;161(5):17431748.,Tissue ischemia time affects gene and protein expression patterns within minutes following surgical tumor excision.,术前血指临床诊断明确,患者未经任何治疗,即放疗、化疗及免疫治疗等,已接受上述治疗的患者样本需详细注明。,术后血指接受手术后2周,患者未接受任何放疗、化疗或免疫治疗等。,202下2000r/min离心20分钟。术前血指临床诊断,16,1,、取血液标本,每例采集,10ml,(不少于,5ml,),约,10ml,全血平均分装于红帽管(不含抗凝剂,,1,管)和紫帽管(含,2%EDTA,抗凝剂,,2,管)中。,2,、红帽管用于分离血清,室温放置,30,分钟后离心;紫帽管用于分离血浆及淋巴细胞。,3,、,1500r/min,离心,10,分钟,此时悬液分层,上层淡黄色为血清(红帽管)或血浆(紫帽管),底层为红细胞,紫帽管中中层呈灰白色的为外周血淋巴细胞。,4,、轻轻吸取淡黄色上层血清(血浆)放入,1.5ml,离心管中,每管,200l,,共,12,管(血清,6,管,血浆,6,管),做好标记。,5,、新鲜抗凝血(含,2%EDTA,抗凝)去血浆后,按照,1:1,比例加入,PBS,液混匀。,6,、,15ml,离心管内先加入,3ml,淋巴细胞分离液,后加入,6ml,稀释样品,注意加入样品要缓慢进行,不要冲破液面,影响离心效果。,202,下,2000r/min,离心,20,分钟。,7,、离心后血样分四层,将移液管插入液面,轻吸灰白色的淋巴细胞层,放入另一,15ml,离心管中,注意吸取过程中避免吸入分层液和血浆。,8,、按,1:5,的比例向淋巴细胞中加入,PBS,液,混匀洗涤,室温,1000r/min,离心,10min,。,9,、弃去上清液保留底部沉淀,适用,1.5mlPBS,液吹打洗涤,置入标记好的,1.5ml,细胞冻存管中,高速离心机,500r/min,离心,5,分钟。,10,、弃去上清液保留底部沉淀,血清、血浆及淋巴细胞分装完毕后贴好二维标签。,1、取血液标本,每例采集10ml(不少于5ml),约10ml,17,质量控制,样本DNA完整性检测,方法一提取样本基因组DNA,检测OD260/OD280值。进行0.7%琼脂糖凝胶电泳。通过DNA电泳判断组织标本的基因组是否完整。无基因组DNA或DNA出现明显降解为不可用样本。,方法二通过PCR选择扩增管家基因,如GAPD、HHPRT、actin,分析扩增产物的含量。产物含量相对较少或无产物,可判断为不可使用标本。,质量控制样本DNA完整性检测,18,质量控制,样本RNA完整性检测,方法二RTPCR扩增actin、HHPRT管家基因,分析扩增产物的含量,产物含量相对较少或无产物可判断为不可用样本。,方法三Northern Blot检测actin、HHPRT管家基因,无印记者列为不可使用样本。,质量控制样本RNA完整性检测,19,蛋白质完整性检测,蛋白质完整性通过Western Blot进行检测,检查标本样本中actin的蛋白表达量变化,通过分析印记条带,判断蛋白量是否有变化,无条带或条带变弱者为发生组织降解样本。,蛋白质完整性检测,20,结果,自,2010,年,7,月建库以来共收集保存了各类肿瘤(胃癌、结肠癌、直肠癌、甲状腺癌、胃肠道间质瘤等)患者的组织标本,1333,例,胃癌患者,424,例,直肠癌,267,例,结肠癌,246,例,甲状腺肿瘤,254,例,胃肠道间质瘤,45,例,其他类型肿瘤,97,例。,标本总量,11919,份,其中包括肿瘤组织,1170,份,肿瘤旁组织,900,份,正常组织,1113,份,血清,3923,份,血浆,3931,份,淋巴细胞,843,份,粪便,39,份。,已向外省提供,60,份患者血淋巴细胞样本,用于,DNA,相关研究,效果良好。,结果自2010年7月建库以来共收集保存了各类肿瘤(胃癌、结肠,21,手术结束后,标本离体30分钟内完成,在临床肿瘤专家的指导下,在不影响病理诊断取材需要的前提下,采集组织样本。,不能满足研究者对组织块的个性化需求。,优点研究者能获得他们需要的组织样本,能够满足其研究的个性化需求。,手术结束后,标本离体30分钟内完成,在临床肿瘤专家的指导下,在不影响病理诊断取材需要的前提下,采集组织样本。,低温冻存时间对肿瘤组织生物大分子的影响J.,HIV感染患者不列为采集对象。,北京大学季加孚等研究发现手术后1 h内取材的组织经过3年低温保存,90以上的标本仍有清晰的28S和18S RNA条带,提示RNA完整性较好4,生物样本库资源信息管理系统,5ml离心管中,每管200l,共12管(血清6管,血浆6管),做好标记。,HIV感染患者不列为采集对象。,10、弃去上清液保留底部沉淀,血清、血浆及淋巴细胞分装完毕后贴好二维标签。,Am J Pathol.,5mlPBS液吹打洗涤,置入标记好的1.,5ml离心管中,每管200l,共12管(血清6管,血浆6管),做好标记。,DNA分子稳定性较mRNA好,在80环境中保存5年,DNA完整性良好5,前瞻性收集模式研究者指定需要的组织类型,同时也制定出所需的组织采集、处理及储存方法。,8、按1:5的比例向淋巴细胞中加入PBS液,混匀洗涤,室温1000r/min离心10min。,1、取血液标本,每例采集10ml(不少于5ml),约10ml全血平均分装于红帽管(不含抗凝剂,1管)和紫帽管(含2%EDTA抗凝剂,2管)中。,北京大学季加孚等研究发现手术后1 h内取材的组织经过3年低温保存,90以上的标本仍有清晰的28S和18S RNA条带,提示RNA完整性较好4,HBV及HCV感染者需在标本上明确注明。,低温冻存时间对肿瘤组织生物大分子的影响J.,HBV及HCV感染者需在标本上明确注明。,方法三Northern Blot检测actin、HHPRT管家基因,无印记者列为不可使用样本。,优点研究者能获得他们需要的组织样本,能够满足其研究的个性化需求。,诊断学理论与实践 2009,V018,No1,产物含量相对较少或无产物,可判断为不可使用标本。,优点研究者能获得他们需要的组织样本,能够满足其研究的个性化需求。,无基因组DNA或DNA出现明显降解为不可用样本。,术前血指临床诊断明确,患者未经任何治疗,即放疗、化疗及免疫治疗等,已接受上述治疗的患者样本需详细注明。,6、15ml离心管内先加入3ml淋巴细胞分离液,后加入6ml稀释样品,注意加入样品要缓慢进行,不要冲破液面,影响离心效果。,2、红帽管用于分离血清,室温放置30分钟后离心;,4、轻轻吸取淡黄色上层血清(血浆)放入1.,HIV感染患者不列为采集对象。,DNA分子稳定性较mRNA好,在80环境中保存5年,DNA完整性良好5,蛋白质完整性通过Western Blot进行检测,检查标本样本中actin的蛋白表达量变化,通过分析印记条带,判断蛋白量是否有变化,无条带或条带变弱者为发生组织降解样本。,优选肿瘤组织库的建立与管理,检测HIV以及嗜肝病毒HBV及HCV感染情况。,缺点不能提供新鲜的、未被冰冻的人体组织,亦不能提供某些有特殊加工需求的组织样本。,6、15ml离心管内先加入3ml淋巴细胞分离液,后加入6ml稀释样品,注意加入样品要缓慢进行,不要冲破液面,影响离心效果。,手术结束后,标本离体30分钟内完成,在临床肿瘤专家的指导下,,22,
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