犬巴贝斯虫荧光定量PCR检测方法

ICS 11.220B 41DB 21辽 宁 省 地 方 标 准DB 21/ XXXXXXXXX犬巴贝斯虫荧光定量 PCR 检测方法Detection of fluorescent quantitation PCR for Babesia canis点击此处添加与国际标准一致性程度的标识（报批稿）本稿完成日期：2018 年 9月 XXXX - XX - XX 发布 XXXX - XX - XX 实施辽 宁 省 质 量 技 术 监 督 局  发 布DB21/ XXXXXXXXXI目  次前  言 .II1 范围 .12 规范性引用文件 .13 缩略语 .14 原理 .15 仪器和器材 .16 试剂和引物 .27 样品的采集和前处理 .28 操作步骤 .29 检测过程中防止交叉污 染的措施 .310 废弃物处理 4DB21/ XXXXXXXXXII前 言本标准按照 GB/T 1.1 2009 给出的规则起草。本标准由辽宁省畜牧兽医局提出并归口。本标准起草单位：辽宁省动物疫病预防控制中心、辽宁省动物医学研究院。本标准主要起草人：高志峰、张才、杨国丽、邓文超、张健、马建山、高原、兰德松。DB21/ XXXXXXXXX1犬巴贝斯虫荧光定量 PCR 检测方法1 范围本标准规定了犬巴贝斯虫的荧光定量PCR检测方法的技术要求，包含规范性引用文件、缩略语、原理、仪器和器材、试剂和引物、样品的采集和前处理、操作步骤、检测过程中防治交叉污染的措施、废弃物处理等。本标准适用于在 生 物 安 全 级 （ BSL-2） 以 上 的 实 验 室 进 行 全血液样品中犬巴贝斯虫核酸的检测，适用于犬巴贝斯虫病的确诊及流行病学调查。2 规范性引用文件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。GB 19489 实验室生物安全通用要求GB/T 19495.2 转基因产品检测 实验室技术要求中华人民共和国农业部公告2003年第302号兽医实验室生物安全技术管理规范中华人民共和国农业部公告2017年第25号 病死及病害动物无害化处理技术规范3 缩略语该部分对本技术规范中用到的缩略语进行了注解：DNA：脱氧核糖核酸（deoxyribonucleic acid）bp：碱基对（base pair）PCR：聚合酶链式反应（polymerase chain reaction）dNTP：脱氧核糖核苷三磷酸（Deoxy-ribonucleoside triphosphate）Taq酶：Ex Taq DNA聚合酶（Taq DNA polymerase）TAE：三羟甲基氨基甲烷-乙酸电泳缓冲液（Tris acetate-EDTA buffer）4 原理巴贝斯虫病是指由巴贝斯科的原虫所引起的一种梨形虫病，主要以侵害家畜的红细胞为特征的血液原虫病。犬巴贝斯虫病是一种经硬蜱传播的血液原虫病，临床上以严重贫血、高热、黄疸、呼吸困难为特征。根据犬巴贝斯虫（Babesia cains, B. canis）裂殖子基因序列设计一对引物，在DNA聚合酶催化下，以母链DNA为模板，以引物为延伸起点，通过变性、退火和延伸，体外复制出与母链模板DNA互补的子链DNA。5 仪器和器材DB21/ XXXXXXXXX25.1 低温高速离心机（最大离心力 12 000 rpm）.5.2 冰箱：41冰箱，-201 冰箱，-701冰箱。5.3 生物安全柜。5.4 荧光 PCR扩增仪。5.5 分析天平。5.6 离心管：1.5 ml 离心管和 0.2 ml PCR 专用离心管。5.7 微量可调移液器：1000 l，200 l，100 l，50 l，20 l，10 l，2 l。6 试剂和引物注：本技术规范中使用的试剂，除另有说明外，所有实验使用的试剂等级均为不含RNA或RNase的分析纯或生化试剂；所有试剂均用无菌的容器分装。6.1 5 mMol/L 的 Tris/HCl(pH 7.58.0)6.2 灭菌双蒸水6.3 70%乙醇6.4 犬巴贝斯虫阳性对照组基因6.5 特异性引物：正向引物：5- TGTTGCAGTTAAAAAGCTCGTAG TTG-3 反向引物：5- TCCATGCTGAAGTATTCAAGA CACA-3。6.6 基因组 DNA纯化试剂盒 100次、购自 TaKaRa公司，常温保存6.7 荧光定量试剂盒FastStart Universal SYBR Green Master(ROX)。产品在-15至-25条件下可稳定存放至标签上的有效期之前。若存放于28条件 ，仅可短期储存不超过1个月。7 样品的采集和前处理7.1 于犬前肢臂头静脉取300 l抗凝血，4保存，4h内使用全血基因组DNA提取试剂盒提取DNA。将获得的DNA放置20保存。7.2 采样时避免接触血液，尽量使用一次性采血针及配套采血管（EDTA，2Na-EDTA，肝素均可）采血。7.3 采集或处理的样品在28条件下保存应不超过24 h；若需长期保存，应放置-70冰箱，但应避免反复冻融(冻融不超过3次)。采集的样品密封后，采用保温壶或保温桶加冰密封，在68 h之内运送到实验室。7.4 按照兽医实验室生物安全技术管理规范进行样品的生物安全标识。8 操作步骤8.1 全血基因组的提取8.1.1 按处理血液样品数准备1.5 ml离心管，并各加入 GenTLE Solution I 500l。8.1.2 把混合均匀的100 l血液，加入到分装好的 GenTLE Solution I 的离心管中，立即振荡数秒钟。不管处理多少样品，血液加入到 GenTLE Solution I 中，要立即进行振荡混合，否则有可能降低收取的DNA量。DB21/ XXXXXXXXX38.1.3 室温放置 10 min以上，然后在室温条件下 12 000 rpm离心5min。离心时，请注意离心管在离心机里的摆放方向要统一，离心管的小耳朵朝上。此时几乎看不到DNA沉淀。若离心温度低，会对收取的DNA量和纯度有影响，请于20以上离心。8.1.4 用移液器小心除去管中溶液，此时沉淀看不清，紧贴在离心管外侧（带小耳朵一侧）的内壁上，除去溶液时，请一定注意微量移液器吸头不要碰到离心管外侧的内壁，插到离心管内侧的底部，注意不要吸走沉淀物。8.1.5 加入1 ml的 GenTLE Solution II。此时 GenTLE Solution II 应沿着离心管内侧的内壁加入到离心管中。特别注意操作步骤4（除去 GenTlE Solution I 和血液混合物）以及操作步骤10（除去 GenTLE Solution III 和异丙醇混合物）的实验操作特别重要，请严格按操作方法进行。8.1.6 轻柔地上下颠倒离心管数次，室温12 000 rpm 以上离心2min，用微量移液器小心地除去上清溶液（方法参见实验操作4）。剧烈振荡将影响收量和纯度。8.1.7 向离心管中加入 GenTLE Solution III 500l，轻微振荡 10 s 充分混合。8.1.8 室温12 000rpm离心5min，把上清溶液移至另一个新的离心管中。 8.1.9 加入等体积（约500l）的异丙醇，轻柔地上下颠倒数次，均匀混合。 8.1.10 4、12 000 rpm 离心 5 min，小心除去上清溶液。 GenTLE Solution III 中含有影响酶反应的物质，所以一定要除净上清溶液，但应注意不要吸走沉淀。8.1.11 加入1 ml的70%乙醇清洗沉淀，4、12 000 rpm 离心5min，小心地除去上清溶液（方法参见4）。8.1.12 干燥沉淀。因为该方法提取的DNA较大，完整性好，所以请一定不要干燥过度。Tube（离心管）中看不到有明显的液体或没有乙醇气味后，就可以加入TE进行溶解。如果沉淀已经变白，说明干燥过度，此时加入TE，可能沉淀不能完全溶解，DNA的收量可能会受到影响。8.1.13根据下一步实验需要，用 1050 l 适当的5 mMol/L 的Tris/HCl(pH 7.58.0)溶解沉淀。8.2 荧光定量 PCR 的方法8.2.1 冰上操作。8.2.2 准备0.2 ml Tube若干（数目为样品数目+2）。8.2.3 向每个管中加入（1）2SYBR Master Mix 10.0 l；（2）20 mol/l正反向引物各0.1 l；（3）去离子水7.8 l；（4）样品2 l，其中2个管分别加入2l灭菌双蒸水和2l阳性对照基因。8.2.4 震荡混匀后使用离心机离心，此时拿出Tube时应小心不可以让聚集在管底的液体弹起。8.2.5 放入荧光定量 PCR仪，反应条件为：95 3 min，95 15 s，60 60 s，72 30 s，35个循环。8.2.6 荧光定量PCR反应结束后，从荧光定量PCR仪直接调取荧光定量PCR溶解曲线数据，进行溶解曲线分析。8.3 结果判定当样品的荧光定量PCR溶解曲线数据与阳性对照一致为有规律的扩增曲线，而空白组（即双蒸水组）无扩增曲线时，则样品为检测阳性样品；若当样品的荧光定量PCR溶解曲线数据与空白组（即双蒸水组）一致无扩增曲线，而阳性对照可见有规律的溶解曲线，则样品为检测阴性样品。9 检测过程中防止交叉污染的措施DB21/ XXXXXXXXX4按照GB/T 19495.2的规定执行。10 废弃物处理按照 GB19489 的规定执行。_