重组DNA-分子克隆技术

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PCR,和电泳,挑取平板上生长的单菌落直接进行,PCR,;,单菌落于液体培养基中培养的菌液,PCR,;,对提取的质粒进行,PCR,;,凝胶,电泳检测,加样孔,DNA Marker,空质粒,重,组质粒,重组质粒,酶切,重组质粒的,PCR,扩增片段,酶切鉴定结果实例图,4.,分子杂交法,利用,32,P,标记的探针与转移至硝酸纤维素膜上的,转化子,DNA,或克隆的,DNA,片段进行分子杂交,直,接选择并鉴定目的基因。,原位杂交,Southern,印迹,5.,免疫学方法,利用特异抗体与目的基因表达产物相互作,用进行筛选。包括:免疫化学方法、酶免,检测法,放射性抗体检测法,滤,膜(固定抗体),+,第,6,步:克隆基因的表达,1.,表达载体的选择和构建,2.,受体细胞的建立和转化,3.,目的基因的表达及检测,4.,表达产物的分离和纯化,5.,表达产物的应用,1.,表达载体的选择和构建,(,1,)表达载体的选择,原核表达体系,大肠杆菌是当前采用最多的原,核表达体系,运用大肠杆菌表达载体符合下,述标准:,含大肠杆菌适宜的选择标志,具有能调控转录、产生大量,mRNA,的强启动子,含适当的翻译控制序列和翻译起始点等,含有合理设计的多接头克隆位点,以确保目的基因,按一定方向与载体正确衔接表达产物的分离、纯化。,大肠杆菌表达体系中尚有一些不足之处:,由于缺乏转录后加工机制,只能表达克隆的,cDNA,,,不宜表达真核基因组,DNA,由于缺乏适当的翻译后加工机制,表达的真核蛋白,质不能形成适当的折叠或进行糖基化修饰,表达的蛋白质常常形成不溶性的包涵体,欲使其具,有活性尚需进行复杂的复性处理,很难表达大量的可溶性蛋白。,2,真核表达体系,与原核表达体系比较,真核表达体系如酵母、昆虫、哺乳类动物细胞表达体系显示了较大优势性。尤其是哺乳类动物细胞,不仅可表达真核的,cDNA,,而且还可表达真核基因组,DNA,;将表达载体导入真核细胞的过程称转染,常用于细胞转染的方法有:磷酸钙转染、,DEAE,葡聚糖介导转染、电穿孔法、脂质体转染及显微注射。,3,、转基因动植物,将目的基因构建在动植物表达载体上,然后转化到动植物体内,在适宜启动子的作用下,目的基因在体内获得高效表达。通常用的转基因植物的操作有农杆菌介导法、花粉管通道法和基因枪方法。,表达载体的构建,外源基因在受体细胞中的表达,重组子,目的基因的,mRNA,表达蛋白质,大肠杆菌(,E.coli,),受体细胞,目的基因表达产物的检测,蛋白质的,PAGE,对照 样品,Marker,基因表达检测实例图,目的蛋白的分离纯化,分子筛,亲和柱,离子交换,抗原抗体,目的蛋白,基因载体,目的基因,质粒 噬菌体 病毒,PCR,cDNA,人工合成 基因文库,限制性内切酶,有,切口的载体,有,切口的目的基因,DNA,连接酶,重组体,转化 转染 体外包装,带重组体的,宿主细胞,表,型,筛选 电泳法 核酸杂交 免疫学方法,目的基因的表达,相关问题,一、引物的设计,1,、引物设计原则,(,1,),引物的长度一般为,15-30,bp,,常用的是,18-27,bp,,但不应大于,38,,因为过长会导致其延伸温度大于,74,,不适于,Taq,DNA,聚合酶进行反应。,(,2,),引物序列在模板内应当没有相似性较高,尤其是,3,端相似性较高的序列,否则容易导致错配。引物,3,端出现,3,个以上的连续碱基,如,GGG,或,CCC,,也会使错误引发机率增加。,(,3,),引物,3,端的末位碱基对,Taq,酶的,DNA,合成效率有较大的影响。不同的末位碱基在错配位置导致不同的扩增效率,末位碱基为,A,的错配效率明显高于其他,3,个碱基,因此应当避免在引物的,3,端使用碱基,A,。另外,引物二聚体或发夹结构也可能导致,PCR,反应失败。,5,端序列对,PCR,影响不太大,因此常用来引进修饰位点或标记物。,(,4,),引物序列的,GC,含量一般为,40-60%,,过高或过低都不利于引发反应。上下游引物的,GC,含量不能相差太大。,(,5,),引物所对应模板位置序列的,Tm,值在,72,左右可使复性条件最佳。,Tm,值的计算有多种方法,如按公式,Tm,4(G+C),2(A+T),,在,Oligo,软件中使用的是最邻近法,(the nearest neighbor method),。,(,6,),G,值是指,DNA,双链形成所需的自由能,该值反映了双链结构内部碱基对的相对稳定性。应当选用,3,端,G,值较低(绝对值不超过,9,),而,5,端和中间,G,值相对较高的引物。引物的,3,端的,G,值过高,容易在错配位点形成双链结构并引发,DNA,聚合反应。,(,7,),引物二聚体及发夹结构的能值过高(超过,4.5kcal/mol,)易导致产生引物二聚体带,并且降低引物有效浓度而使,PCR,反应不能正常进行。,(,8,),对引物的修饰一般是在,5,端增加酶切位点,应根据下一步实验中要插入,PCR,产物的载体的相应序列而确定。,2,、引物设计和评价软件,Premier Primer 5,Oligo,6,在线软件,Oligonucleotide,Properties Calculator,3,、酶切位点的引入,(,1,)载体序列和目的基因序列的分析。选择表达载体多克隆位点处具有的而目的序列内部没有的酶切位点,引入引物的,5,末端。,(,2,)载体中引入序列后读码框的分析,避免出现移码,(,3,)保护碱基的选择,(,4,)进行双酶切的两个酶的反应条件分析。包括酶切温度,缓冲液,酶切效率等。,酶切位点分析常用软件,Bioedit,、,Bioxm,等,二、融合基因的构建,将两个不同的基因融合在一起,通过利用其中一个基因表达产物的功能,以更方便的研究另一个基因产物。,如,GST,目的基因、,His,目的基因、荧光蛋白目的基因等。,为保证各个基因产物的独立性和生物学功能,通常在两个基因中间插入一柔性链,,柔性链选择为,G-S,即,GGATCC,的碱基序列或者为,(G,4,S),3,即碱基序列,GGTGGCGGTGGAAGCGGCGGTGGCGGAAGCGGCGGTGGCGGCAGC,G,为分子量最小的氨基酸,没有手性碳,侧链最短,空间位阻最小,能增加柔韧性;而丝氨酸是亲水性最强的氨基酸,能增加亲水性,以保持两种蛋白的独立。这样通过插入一柔性,Linker,保持了两种蛋白各自的构象和功能。,三、载体的改造,1,、在载体中引入酶切位点,在现有载体不能满足实验需求的情况下,即在分析目的基因后,确定载体上,mcs,处的酶切位点不能使用的情况下,可考虑在载体上引入其他的酶切位点。,首先要分析载体的全序列,确保在载体的其他位点不具有该酶切位点。,引入酶切位点后,要确保目的基因插入后不会发生移码,2,、特定用途载体的构建 在已有载体的基础上,通过插入一些特定序列,来构建满足实验需求的载体。,如在植物表达载体上引入抗性基因、荧光蛋白等,可用以抗性筛选和表达检测,在载体上引入强启动子或增强子,使目的基因在特定组织中能够大量表达,在普通载体上引入内含子和,mcs,,构建为专门用于,RNAi,的载体,
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