微生物限度检查基本技术

Click to edit Master title style,Click to edit Master text styles,Second level,Third level,Fourth level,Fifth level,11/7/2009,#,单击此处编辑母版标题样式,1,*,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,微生物限度检查基本技术,目录,一、药品微生物限度检查3,二、药品包装材料微生物限度检查法20,三、问题解答22,一、药品微生物限度检查,1、几个名词解释,（1）微生物的概念,所谓微生物是一群个体微小、结构简单肉眼不能直接看到，必须借助显微镜以及其它手段才能辨别的微小生物。,（2）菌落,一般是指在固体培养基上，由细菌单细胞经过适宜温度培养在一个局部位置上，繁殖而成的可见菌体细胞群。,（3）无菌技术,无菌技术主要指在微生物实验工作中，控制或防止各类微生物的污染及其干扰的一系列操作方法和有关措施，其中包括无菌环境设施，无菌实验器材以及无菌操作等统称为无菌技术。,（4）消毒,消毒是指杀灭病因微生物的繁殖体，但杀不死芽孢等全部微生物。,常用的清毒剂的种类,75%乙醇、甲醛、碘酊、0.1%新洁尔灭、乳酸、过氧乙酸、3%来苏尔、过氧化氢等。,（5）灭菌,凡能杀灭物体中所有微生物繁殖体及芽孢或孢子的作用称为灭菌。,常用的灭菌方法,(51)干热灭菌法,(52)湿热灭菌法,（6）微生物限度检查法定义,微生物限度检查法系检查非规定灭菌制剂及其原料、辅料受微生物污染程度的方法。检查项目包括细菌数、霉菌数、酵菌数及控制菌检查。,（6,1）操作环境,微生物限度检查应在环境洁净度10000级下的局部洁净度100级的单向流空气区域内进行。检查全过程必须严格遵守无菌操作，防止再污染。单向流空气区域、工作台面及环境应定期按医药工业洁净室（区）悬浮粒子、浮游菌和沉降菌的测试方法的现行国家标准进行洁净验证。,（62） 培养温度和时间,本检查法中细菌培养温度为3035C；时间为48小时。霉菌、酵母菌培养温度为2328 C；时间为72小时。控制菌培养温度为3537 C；时间为48小时。,眼用制剂微生物限度检查用薄膜过滤法，培养时间为7天。,2、微生物限度检查方法学验证,（1）验证采用的方法：,、常规法,、稀释法,、离心沉淀集菌法,、薄膜过滤法,、中和法,、离心和培养基稀释法,、离心和薄膜过滤法,（2）、细菌、霉菌及酵母菌计数方法的验证,（21）、菌种,验证试验所用的菌株传代次数不得超过5代（从菌种保存中心获得的冷冻干燥菌种为第0代），并采用适宜的菌种保藏技术，以保证试验菌株的生物学特性。,（,1）大肠埃希菌(CMCC (B) 44102),（2）金黄色葡萄球菌(CMCC(B) 26003),（3）枯草芽孢杆菌(CMCC(B) 63501),（4）白色念珠菌(CMCC(F) 98001),（5）黑曲霉(CMCC(F) 98003),(22)、菌液制备,接种大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌、枯草芽孢杆菌的新鲜培养物至营养肉汤培养基或营养琼脂养基中，培养1824小时，接种白色念珠菌的新鲜培养物至改良马丁培养基或改良马丁琼脂培养基中，培养2428小时。上述培养物用0.9%无菌氯化钠溶液制成每1m1含菌数为50100cfu的菌悬液。接种黑曲霉的新鲜养物至改良马丁琼脂斜面培养基中，培养57天，加入35m10.9%无菌氯化钠溶液，将孢子洗脱。然后，吸出孢子悬液（用管口塞有适度疏松的无菌棉花或管口外包扎无菌纱布能过滤菌丝的无菌毛细吸管）至无菌试管内，用0.9%无菌氯化钠溶液制成每1m1含孢子数50100cfu的孢子悬液,（23）、验证方法,验证试验至少应进行3次独立的平行试验，并分别计算各试验菌每次试验的回收率。,首先应进行预试验，做金黄色葡萄球菌和白色念珠菌的回收率，然后再确定验证方法。,（1）试验组 平皿法计数时，取试验可能用的最低稀释级供试液1m1和50100cfu试验菌，分别注入平皿中，立即倾注琼脂培养基，每株试验菌平行制备2个平皿，按平皿法测定其菌数。薄膜过滤法计数时，取规定量试验可能用的最低稀释级供试液，过滤，冲洗，在最后一次的冲洗液中加入50100cfu试验菌，过滤，按薄膜过滤法测定其菌数。,（2）菌液组 测定所加的试验菌数,（3）供试品对照组 取规定量供试液，按菌落计数法测定供试品本底菌数。,（4）稀释剂对照组 若供试液制备需要分散、乳化，中和、离心或薄膜过滤等特殊处理时，应增加稀释剂对照组，以考察供试液制备过程中微生物受影响的程度。试验时，可用相应的稀释液代替供试品，加入试验菌，使最终菌浓度为每1m1供试液含50100cfu，按试验组的供试液制备方法和菌落计数方法测定其菌数。,（24）、结果判断,在3次独立的平行试验中，稀释剂对照组的菌回收率（稀释剂对照组的平均菌落数占菌液组的平均菌落数的百分率）应均不低于70%。若试验组的菌回收率（试验组的平均菌落数减去供试品对照组的平均菌落数的值占菌液组的平均菌数的百分率）均不低于70%，照该供试液制备方法和计数法测定供试品的细菌、霉菌及酵母菌数；若任一次试验中试验组的菌回收率低于70%，应采用培养基稀释法、离心沉淀集菌法、薄膜过滤法、中和法等方法或联合使用这些方法消除供试品的抑菌活性，并重新进行方法验证。,当最低稀释级的供试液含有抑菌活性，且采用上述消除抑菌活性的方法后试验菌的回收率还无法达到计数方法验证的要求时，根据供试品的微生物限度标准和菌数报告规则，在不影响检验结果判断的前提下，可采用高一稀释级的供试液重新进行回收率的测定。若试验菌的回收率符合计数方法验证的要求，应以该稀释级供试液作为最低稀释级的供试液进行试验。,验证试验也可与供试品的细菌、霉菌及酵母菌计数同时进行。,（3）、细菌、霉菌及酵母菌计数方法,试验准备：（干热灭菌、湿热灭菌）,把灭菌好的所有物品搬运至传递窗，打开紫外灯杀菌，至少30分钟。,检查时，按已验证的计数方法进行供试品的细菌、霉菌及酵母菌菌数的测定。,取按验证的方法制备的均匀供试液，用pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液稀释成1：10、1：10、1：10等稀释级。,（31）、平皿法,采用平皿法进行菌数测定时，应取适宜的连接23个稀释级的供试液。,取供试液1m1，置直径90mm的无菌平皿中，注入1520 ml温度不超过45的溶化的营养琼脂培养基或玫瑰红钠琼脂培养基或酵母浸出粉胨葡萄糖琼脂培养基（含蜂蜜或王浆的液体制剂时），混匀，凝固，倒置培养。每稀释级每种培养基至少制备2个平板。,（311）、 阴性对照试验,取试验用的稀释液1m1，置无菌平皿中，注入培养基，凝固，倒置培养。每种计数用的培养基各制备2个平板，均不得有菌生长。,（312）、培养和计数,除另有规定外，细菌培养48小时，逐日点计菌落数，一般以48小时的菌落数报告；霉菌、酵母菌培养72小时，逐日计点菌落数，一般以72小时的菌落数报告；必要时，可适当延长培养时间至57进行菌落计数并报告；菌落蔓延生长成片的平板不宜计数。点计菌落数后，计算各稀释级供试液的平均菌落数，按菌数报告规则报告菌数。若用稀释级两个平板的菌落平均数不小于15，则两个平板的菌落数不能相差1倍或以上。,一般营养琼脂培养基用于细菌计数；玫瑰红那琼脂培养基用于霉菌及酵母菌计数；酵母浸出粉胨葡萄糖琼脂培养基用于酵母菌计数。在特殊情况下，若营养琼脂培养基上长有霉菌和酵母菌、玫瑰红钠琼脂培养基上长有细菌，则应分别点计霉菌和酵母菌、细菌菌落数。然后将营养琼脂培养基上的霉菌和酵母菌数或玫瑰红钠琼脂培养基上的细菌数，与玫瑰红钠琼脂培养基中的霉菌和酵母菌数或营养琼脂培养基中的细菌数进行比较，以菌落数高的培养基中的菌数为计数结果。,含蜂蜜、王浆的液体制剂，用玫瑰红钠琼脂培养基测定霉菌数，用酵母浸出粉胨葡萄糖琼脂培养基测定酵母菌数，合并计数。,（313）、菌数报告规则,宜选取细菌、酵母菌平均菌落数在30300之间、霉菌平均菌落数在30100之间的稀释级，作为菌数报告（取两位有效数字）的依据。,当仅有1个稀释级的菌落数符合上述规定，以该级的平均菌落数乘以稀释倍数的值报告菌数。,当同时有2个稀释级的菌落数符合上述规定时，视两者比值（比值为高稀释级的菌数乘以稀释倍数的值除以低稀释级的菌落数乘以稀释倍数的值）而定。若比值不大于2，以两稀释级的菌落数乘以稀释倍数的均值报告菌数；若比值大于2但不超过5时，以低稀释级的菌落数乘以稀释倍数的值报告菌数；当出现比值大于5，或高稀释级的菌落数大于或等于低稀释级的菌数等异常情况，应查明原因再行检查，必要时，应进行方法的重新验证。,当各稀释级的平均菌落数小于30，以最低稀释级的平均菌落数乘以稀释倍数的值报告菌数。,如各稀释级的平板无菌落生长，或仅最低稀释级的平均菌落数生长，但平均菌落数小于1小时，以1乘以最低稀释倍数的值报告菌数,。,菌落数报告举例,序列,各稀释级平板平均菌落数,菌落数,1：10 1：100 1：1000,1,35 2 0,350,2,96 37 2,960,3,不可计 200 35,28000,4,25 4 2,250,5,0 0 0,10,（314）、操作的注意事项,制备的供试液力求分散均匀，使之菌体能均匀分散，其次在每次吸取供试液注皿的时候，都要把供试液摇匀，这样能使两个平板上生长的菌落数比较接近。,浇注培养基的温度不能高，浇注好的平板摇匀后即要求冷却，不要把平板垒起来，这样不利于冷却。,操作时间不能太长，一般要求从供试品稀释到注皿的时间不要超过1小时，因为有些活力较好的菌体在制备供试液的过程中就可行细胞分裂，这样测得的菌数就不能代表原始的污染程度。另外，供试液的平皿底部接触时间太长，会使菌液药渣附着不宜摇散。,可以在培养基中加0.1的TTC 。,（314）、操作的注意事项,制备的供试液力求分散均匀，使之菌体能均匀分散，其次在每次吸取供试液注皿的时候，都要把供试液摇匀，这样能使两个平板上生长的菌落数比较接近。,浇注培养基的温度不能高，浇注好的平板摇匀后即要求冷却，不要把平板垒起来，这样不利于冷却。,操作时间不能太长，一般要求从供试品稀释到注皿的时间不要超过1小时，因为有些活力较好的菌体在制备供试液的过程中就可行细胞分裂，这样测得的菌数就不能代表原始的污染程度。另外，供试液的平皿底部接触时间太长，会使菌液药渣附着不宜摇散。,可以在培养基中加0.1的TTC 。,（32）、薄膜过滤法,采用薄膜过滤法，滤膜孔径应不大于0.45um，直径一般为50mm，若采用其他直径的滤膜，冲洗量应进行相应的调整。选择滤膜材质时应保证供试品及其溶液不影响微生物的充分被截留。滤器及滤膜使用前应采用适宜的方法灭菌。使用时，应保证滤膜在过滤前后的完整性。水溶性供试液过滤前先少量的冲洗液过滤以润湿滤膜。油类供试品，其滤膜和过滤器在使用前应充分干燥。为发挥滤膜的最大过滤效率，应注意保持供试品溶液及冲洗覆盖整个滤膜表面。供试液经薄膜过滤后，若需要用冲洗液冲洗滤膜，每张滤膜每次冲洗量为100ml。每片滤膜的总过滤量不宜过大，以避免滤膜上的微生物受损伤。,取相当于每张滤膜含lg或1m1供试品的供试液，加至适量的稀释剂中，混匀，过滤。若供试品每1g或1m1所含的菌较多时，取适宜稀释级的供试液1m1，过滤。用ph7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或其他适宜的冲洗滤膜，冲洗方法和冲洗量同“计数方法的验证”。冲洗后取出滤膜，菌面朝上贴于营养琼脂培养基或玫瑰红钠琼脂培养或酵母渗出粉胨葡萄糖琼脂培养基平板上培养。每种培养基至少制备一张滤膜。,（321）、阴性对照试验,取试验用的稀释液1m1照上述薄膜过滤法操作，作为阴性对照。阴性对照不得有菌生长。,（322）、培养和计数,培养条件和计数方法用平皿法，每片滤膜上的菌落数应不超过100个。,（3，23）、菌数报告规则 以相当于1g或1m1供试品的菌落数报告菌数；若滤膜上无菌数生长，以1报告菌数（每张滤膜过滤1g或1m1供试品），或1乘以最低稀释倍数的值报告菌数。,（4）控制菌检查方法的验证,（41）菌种,对试验菌种的要求同细菌、霉菌及酵母计数方法的验证。,（1）大肠埃希菌（CMCC(B) 44102）,（2）金黄色葡萄球菌(CMCC(B) 26003),（3）乙型付伤寒沙门菌(CMCC(B) 50094),（4）铜绿假单胞菌(CMCC(B) 10104),（5）生孢梭菌(CMCC(B) 64941),（42）菌液制备,（43）验证方法,（431）试验组,（432）阴性菌对照组,（44）结果判断,（5）控制菌检查,（51）阳性对照试验,（52）阴性对照试验,（53）大肠埃希菌,取供试液10ml（相当于供试品1g、1ml、10cm2）,直接或处理后接种至适量（不少于100ml）的胆盐乳糖培养基中，培养1824小时，必要时可延长至48小时。,取上述培养物0.2ml，接种至含5mlMUG培养基的试管内，培养，于5小时、24小时在366nm紫外线下观察，同时用未接种的MUG培养基作本底对照。若管内培养物呈现荧光，为MUG阳性；不呈现荧光，为MUG阴性。观察后，沿培养管的管壁加入数滴靛基质试液，液面呈玫瑰红色，为靛基质阳性；呈试剂本色，为靛基质阴性。本底对照应为MUG阴性和靛基质阴性。,如MUG阳性、靛基质阳性，判供试品检出大肠埃希菌；如MUG阴性、靛基质阴性判供试品未检出大肠埃希菌；如MUG阳性、靛基质阴性，或MUG阴性、靛基质阳性，则应取胆盐乳糖培养基的培养物划线接种于曙红亚甲蓝琼脂培养基或麦康凯琼脂培养基的平板上，培养1824小时。,若平板上无菌落生长、或生长的菌落与麦1所列的菌落形态特征不符，判供试品未检出大肠埃希菌。若平板上无菌落生长、或生长的菌落与麦1所列的菌落形态特征相符或疑似，应进行分离、纯化、染色镜检查和适宜的生化试验，确认是否为大肠埃希菌。,培养基菌落形态,培养基菌落形态,曙红亚甲蓝琼脂,呈紫黑色、浅紫色、蓝紫色或粉红色，菌落中心呈深紫色或无明显暗色中心，圆形，稍凸起，边缘整齐，表面光滑，湿润，常有金属光泽,麦康凯琼脂,鲜桃红色或微红色，菌落中心呈深桃红色，圆形，扁平，边缘整齐，表面光滑，湿润,表1 大肠埃希菌菌落形态特征,（54）大肠菌群,胆盐乳糖发酵管若无菌生长、或有菌生长但不产酸产气，判该管未检出大肠菌群；若产酸产气，应将发酵管中的培养物分别划线接种于曙红亚甲蓝琼脂培养基的平板上，培养1824小时。,若平板上无菌生长，或生长的菌落与表2所列的菌落形态特征不符或为非革兰阴性无牙孢杆菌，判该管未检出大肠菌群；若平板上生长的菌落与表2所列的菌落形态特征相符或疑似，且为革兰阴性无牙孢杆菌应进行确证试验。,表2 大肠菌菌落形态特征,培养基,菌落形态,曙红亚甲蓝琼脂,呈紫黑色、紫红色、红色或粉红色，圆形，扁平或稍凸起，边缘整齐，表面光滑，湿润,麦康凯琼脂,鲜桃红色或粉红色，圆形，扁平或稍凸起，边缘整齐，表面光滑，湿润,确证试验,从上述分离平板上挑选45个疑似菌落，分别接种于乳糖发酵管中，培养2448小时。 若产酸产气，判该胆盐乳糖发酵管检出大肠菌群，否则判未检出大肠菌群。,根据大肠菌群的检出管数，按表3报告1g或1ml供试品中的大肠菌群数。,表3 可能的大肠菌群数表,各供试品量的检出结果,可能的大肠菌群数N(个/g或ml),0.1g或,0.1 ml,0.01g或,0.01ml,0.001g或,0.001ml,+,+,+,_,+,+,_,_,+,_,_,_,1000,100N1000,10N100,10,注+代表检出大肠菌群；一代表未检出大肠菌群。,（55）沙门菌,（56）铜绿假单胞菌,（57）金黄色葡萄球菌,（58）梭菌,（6）结果判断,供试品检出控制菌或其他致病菌时，按一次检出结果为准，不再复试。,供试品的细菌数、霉菌和酵母菌数其中任何一项不符合该品种项下的规定，应从一批样品中随机抽,样，独立复试两次，以3次结果的平均值报告菌数。,眼用制剂检出霉菌和酵母菌数时，须以两次复试结果均不得长菌，方可判供试品的霉菌和酵母菌数符合该品种项下的规定。,若供试品的细菌数、霉菌和酵母菌数、控制菌三项检验结果均符合该品种项下的规定，判供试品符合规定，若其中任何一项不符合该品种项下的规定，判供试品不符合规定。,（7）微生物限度标准（一部有修改的部分）,（71）、含豆豉神曲等发酵原粉的制剂,细菌数 每1g不得过100000个。每1m1不得过1000个。,霉菌和酵母菌数 每1g不得过500个。每1m1不得过100个。,大肠埃希菌 每1g或1m1不得检出。,大肠菌群 每1g应小于100个。每1m1应小于10个。,（72）、阴道、尿道给药制剂,细菌数 每1g、1m1或10cm不得过100个。,霉菌和酵母菌数 每1g、1m1或10cm应小于10个。,金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、梭菌 每1g、1m1或10cm不得检出,（73）、含动物脏器,（包括提取物）及动物类原药材粉（蜂蜜、王浆、动物角、阿胶除外）的口服 给药制剂。,每10g或10ml还不得检出沙门菌。,二、药品包装材料微生物限度检查法,取数个试瓶，加入标示容量1/3量的氯化钠注射液,将盖旋紧,振摇1分钟,取提取液照微生物限度检查法(中华人民共和国药典2000年版二部附录XI J)测定。细菌数每瓶不得超过1000个，霉菌、酵母菌数每瓶不得超过100个，大肠杆菌每瓶不得检出。,2、口服固体聚酯瓶,取本品适量，加入标示容量1/2量的0.9%无菌氯化钠溶液，将盖旋紧，振摇1分钟，提取液进行薄膜过滤，照微生物限度检查法（中华人民共和国药典2000年版二部附录XI J)测定。细菌数每瓶不得超过1000个，霉菌、酵母菌数每瓶不得超过100个，大肠杆菌每瓶不得检出。,3、口服液体瓶,取数个试瓶，加入1/2标示容量的氯化钠注射液,将盖旋紧,振摇1分钟, 提取液进行薄膜过滤，照微生物限度检查法（中华人民共和国药典2000年版二部附录XI J)测定。细菌数每瓶不得超过100个，霉菌、酵母菌数每瓶不得超过100个，大肠杆菌每瓶不得检出。,4、药用滴眼剂瓶（烧伤及手术用滴眼剂瓶除外）,取数个试瓶，加入1/2标示容量的氯化钠注射液,将盖旋紧,振摇1分钟, 提取液进行薄膜过滤，照微生物限度检查法（中华人民共和国药典2000年版二部附录XI J)测定。细菌数每瓶不得超过100个，霉菌、酵母菌不得检出，金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌每瓶不得检出 。,5、外用液体瓶,取数个试瓶，加入1/2标示容量的氯化钠注射液,将盖旋紧,振摇1分钟, 提取液进行薄膜过滤，照微生物限度法（中华人民共和国药典2000年版二部附录XI J)测定。细菌数每瓶不得超过100个，霉菌、酵母菌数每瓶不得超过100个，金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌每瓶不得检出。,6、药用软膏管（大面积烧伤及严重损伤皮肤用除外）,取本品10支，向每支加入标示容量2/3量的0.9%无菌氯化钠溶液，振荡1分钟后，合并提取液备用。照微生物限度检查法（中华人民共和国药典2000年版二部附录XI J)测定。细菌数每支不得超过100个，霉菌、酵母菌数每支不得超过100个，金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌每支均不得检出。,7、药用复合硬片、药用复合膜和袋、药用铝箔、药用复合垫片,取本品用开孔面积20的消毒过的金属模版压在内层面上，将无菌棉签用0.9%无菌氯化钠溶液，稍沾湿，在板孔内擦抹5次，换1支棉签再擦抹5次，每个位置用两支棉签共擦抹10次，共擦抹5个位置100。每支棉签抹完后立即剪断（或烧断），投入盛有30ml0.9%无菌氯化钠溶液的锥型瓶（或大试管）中。全部擦抹棉签投入瓶中后，将瓶迅速摇晃1分钟，即得供试液。取提取液，照微生物限度法（中华人民共和国药典2000年版二部附录XI J)测定。细菌数不得超过1000个/100, 霉菌、酵母菌数不得过100个/100,大肠杆菌不得检出。,三、问题解答,1、微生物限度验证可否用供试品原液做。没用到稀释剂是否要做稀释剂对照组，算回收率。（检验的时候用到稀释剂，验证时候用原液不用稀释剂？,答：微生物限度验证可以用供试品原液。没有用到稀释剂不用做稀释剂对照组。,2、微生物检验时，由-1级稀释到-2级，是用pH7.0氯化钠蛋白胨水溶液还是可用生理盐水，还是均可用？,答：微生物限度检验稀释剂都要用ph7.0氯化钠蛋白胨水溶液，除非有特殊情况。,3、同一样品中吸取1ml结果超过平板最大差值，如何控制？,答：同稀释液两个平板的菌落平均数不小于15，则两个平板的菌落数不能相差1倍以上。操作时尽量用微量移液管，尽量使供试液充分混匀。,4、个别产品微生物方法学验证做不出怎么办？,答：,若没有适宜的方法消除供试品中的抑菌作用，那么验证试验中微生物回收的失败可看成是因供试品的抗菌活性引起的，同时表明该供试品不能被试验菌污染。但是，供试品也可能仅对试验用菌株具有抑制作用，而对其他菌株没有抑制作用。因此，根据供试品须符合的微生物限度标准和菌数报告规则，在不影响检验结果判断的前提下，应采用能使微生物生长的更高稀释级的供试液进行方法验证试验。若验证试验符合要求，应以该稀释级供试液作为最低稀释级的供试液进行供试品检验。,计数方法验证时，采用上述方法若还存在一株或多株试验菌的回收率达不到要求，那么选择回收情况最接近要求的方法和试验条件进行供试品的检验。,5、对YBB00072005微生物限度的具体检验方法的注意点能否讲解？,答：YBB0072005微生物限度检验方法的注意点：（1）严格无菌操作。,（2）在内层面上操作。,（3）最后的报告结果要乘以30。,6、连续生产的不同批号同个品种的成品大肠埃希菌检查，每批次都要做阳性对照吗？,答：同一天试验的话，只要做一个阳性对照就可以；不是同一次试验的话，每次都要做阳性对照。,7、细菌、霉菌和酵母菌计数方法验证中的3次独立的平行试验，是指同批次3次还是不同批次3次独立平行试验？,答：指同品种不同批次3次独立平行试验。,8、要求检查沙门菌，哪些供试用量如何确定？,答：检验沙门菌的供试品，和稀释剂用量无关。,9、 糊精为什么要求检查沙门菌，哪些供试品需要检查沙门菌？,答：2005版药典增补本中修订了糊精的微生物限度检查标准，其中提到了要做沙门菌的检查。一部药典附录规定：含动物脏器（包括提取物）及动物类原药材粉（蜂蜜、王浆、动物角、阿胶除外）的口服溶药制剂。二部药典附录规定：含动物组织（包括提取物）的口服溶药制剂等需要检查沙门菌。,10、同一试验供试品，重复两次，一次长菌较多，另一次长菌较少，如何解释这一现象？,答：供试品污染的不均一性，操作上的习惯和误差。,11、胶囊剂的药品，是否可用薄膜过滤法，如何操作？,答：胶囊剂的药品（固体制剂），可以用薄膜过滤法。可以先用离心法，500转/3分钟，然后进行薄膜过滤。,12、是否可以使用生理盐水代替蛋白胨缓冲液用于微生物检验？,答：,:,除非有要求或标准规定，都不可以使用生理盐水替代蛋白胨缓冲液用于微生物限度检查。,13、微生物限度方法验证案例分析？,答：案例分析前面已经讲过了。,14、日常检验中碰到对方企业的验证方案时，如何处理？,答：碰到对方企业的验证方案时，首先要对该方法进行复核。如先考察金葡和白念的回收率。,15、样品出现数据在不合格边缘时应如何处理与判定？,答：在不合格边缘时，按药典标准处理。合格的话就发合格报告，不合格的话进行复试。,16、纯化水检验量为多少？,答：药典没有具体的规定。个人认为应先考察之前检出的菌的量的数据，取1ml或10ml用于薄膜过滤。计数时应扣除细菌平板上生长的霉菌和霉菌平板上生长的细菌，报告值为两种菌的总和。,17、铜绿假单胞菌是否就是绿脓杆菌？,答：是的,18、在细菌培养过程中，配制的-1和-2稀释级的供试液在培养后，有时候-2会出现1-2个菌落，有时候没有，但-1的出现的菌落数也只是1-2个，偶尔有3个，请问在这样的条件下，是否可以不用做-2的检验计数了？,答：是不可以的,。,19、微生物产品检查中，若某产品的检验结果，细菌和霉菌都未长菌，且MUG也是阴性，无荧光，但胆盐增菌液中漂浮一层未知菌，这菌是属于什么菌？为什么？,答：这种情况有可能出现。因为胆盐乳糖增菌液中的胆盐，只能抑制某些革兰氏阳性菌，所以某些假单胞菌和产气菌等革兰氏阴性菌都能生长，但不一定是大肠埃希菌，必要时可以进行分离培养。,20、若某产品检测结果：-1、-2级别都长了30300之间，那么结果报告以负几来计数报告，如何换算？,答：计算比值，比值大于2，以低稀释级的平均平板菌落数乘以稀释倍数；比值小于2，以两稀释级的菌落数乘以稀释倍数的平均值报告菌数。,(一）、微生物限度检查方法验证结果实例,