地高辛标记探针的Southern印迹方案

地高辛标记探针的DNA印迹方案Southern blot using DIG Prober(分子生物学实验室)Step I 采用地高辛高效标记混合物(ROCHE) 标记DNA探针1 以质粒为模板，PCR扩增序列特异性片段，回收片段，并测定浓度 浓度测定：将回收产物取1l稀释5倍，标准分子量的标记物MAKER分别点1l，2l，4l，6l.然后比较回收产物的条带亮度与MAKER比较后，可以粗略估算浓度。2 取1g模板（第1步扩增回收产物）于1.5ml的eppendorf管中，加入灭菌双蒸水至终体积为16l。3 沸水浴处理10min后迅速于冰上冷却使DNA变性 （1） 摇匀DIG-High Prime（vial 1），取4l加入已热变性的模板DNA中，混匀后，瞬时离心，37保温20h，65处理10min终止反应。4取l电泳检测，标记后的条带稍大于标记前片断。标记好的DNA探针20保存。Step II 基因组DNA酶切1 提取高质量的基因组DNA，浓度1g/l ; 测定浓度的方法同测定探针浓度方法一样。2 选择合适的内切酶（酶切的DNA量20g左右。注意考虑到纯化的损失，约30%，酶切DNA浓度过大时，可以考虑多做几管做浓缩）。50l酶切反应体系：EcoR I (15U/l ) 5l10M buffer 5lgDNA 10l（约10-20g）ddH2O up to 50l注：有些内切酶需加BSA，请参照内切酶说明（包括最适酶切温度）。3 37酶切12h （电泳检测），视酶切情况可延长酶切时间，直至酶切完全。65保温10min停止酶切反应。Step III 预电泳和电泳1 配制0.8 %的琼脂糖凝胶（大胶40ml左右，胶薄较好，利于转膜）。2 加入适量上样缓冲液（Loading Buffer）点样，点上质粒做对照。 注：两边的点样孔尽量空出来；点上marker,再单独一点样孔用溴酚兰做指示，防止跑过。3 120V， 5min；40V，4h。溴酚蓝前沿跑至胶边约1厘米处即可。Step IV 转移胶处理与转膜电泳后用EB染色，紫外光下拍照，然后，切下marker和右上方一角。1 凝胶在灭菌的双蒸水中漂洗片刻。2. 室温下凝胶在0.25M HCl中浸泡15min，使DNA脱嘌呤，摇床上缓慢摇动， （溴酚蓝由蓝色变为黄色）灭菌的双蒸水中漂洗凝胶。3 凝胶转移到10倍于凝胶体积的变性液（1.5M NaCl，0.5M NaOH）中轻轻振荡20min；换液一次，继续漂洗20min。4 灭菌的双蒸水漂洗凝胶片刻，然后置于10倍于凝胶体积的中和液中轻轻振荡20min，换中和液重复一次。换培养皿，用20SSC转移缓冲液漂洗一下仪器：大培养皿3套 换洗过程很重切记清顺序Step V 转膜1 将尼龙膜漂浮于超纯水中至完全浸润，转移至20SSC转移缓冲液中浸泡15min。先尼龙膜再倒水和缓冲液，保证完全浸润。2 组装转移装置：玻璃板+滤纸桥(边缘完全充分浸入20SSC转移缓冲液)+1张滤纸+凝胶(背面朝上)+尼龙膜（做好标记）+滤纸（3层）+吸水纸+玻璃板+500g重物（如下图）方向 注意每层都要用玻棒排净气泡。3 毛细转移装置如图。在20SSC转移缓冲液中毛细转移24h，为提高转膜效果可以适当延长时间；转膜期间经常更换吸水纸及加液（注意防止短路！：用封口膜在四周封好，防止膜上吸水纸接触到膜下缓冲液）。4 转膜结束后，凝胶拍照检测DNA残留状况。5. 取膜，（用铅笔标记样品孔的位置，切角标示方向）毛细转移法具体步骤：1 20SSC浸湿一张whatman 3mm滤纸放在支撑平台上，此平台要比凝胶稍大，形成一个“桥”。2 凝胶反放在浸湿的whatman 3mm滤纸上注意两者之间不能有气泡。3用塑料膜包裹膜的边缘，照凝胶的大小剪一张尼龙膜。4膜（20SCC平衡过）放在凝胶上。5 尼龙膜上放一张whatman 3mm滤纸、一叠吸水纸、上置一玻璃板，其上放一重约0.20.5kg的物品。620SCC的转移缓冲液中充分转移1824h及时换掉浸湿的吸水纸。Step VI 固定，预杂交，杂交1 将尼龙膜浸入6SSC溶液中25min，除去黏附在膜上的凝胶碎片。2 固定：把膜放在两层干燥的吸水纸中央，80烘烤2h。处理后的膜直接用于杂交或用保鲜膜包裹干燥保存于冰箱。3 配制地高辛杂交液：用64ml的无菌超纯水分两次加入DIG Easy Hyb Granules（vial 7）中，迅速于37振荡5min至溶解。（因为试剂盒中vial 7是用大约75ml左右的小瓶装的，原试剂是冻干粉样，配制杂交工作液需加入64mlddH2O，若一次加入会产生大量气泡至溢出，需要先少量加入ddH2O，待其溶解后再加入剩下的部分。）4 将事先加入杂交液（DIG Easy Hyb，vial7，10ml/100cm2）的杂交瓶预热至42，固定好的尼龙膜轻轻卷成圆柱状放入杂交瓶中42预杂交30min，以封闭非特异性位点。5 倒掉预杂交液。标记好的探针(25ng/ml)沸水浴5min（用.ml管并用封口膜封好）, 迅速冰上冷却后, 加入预热至42的杂交液中（3.5ml/100cm2尼龙膜，混合均匀避免产生气泡）。加液顺序：沿壁加5ml杂交液探针5ml杂交液，防止产生气泡。6 将尼龙膜完全接触杂交液，42杂交16-20h，杂交过程避免有气泡。（杂交液冷后会凝，可回收放2用于下次，不凝则探针浓度少）。Step VII 洗膜1 低严谨洗脱：杂交结束后，用2SSC，0.1%SDS洗脱液（现配用时25预热）15-25振荡洗涤2次，每次5min（视膜大小配溶液以没过膜为准）。（配时先放水后入SSC、SDS可防沉淀）2高严谨洗脱： 用预热的0.5SSC，0.1%SDS洗脱液（现配）65-68振荡洗涤2次，每次15min（在杂交炉中进行）。3 再用mlWashing buffer 洗膜5min，滤干洗液进行显色处理。Step VIII 显色试剂配制（现配）：封闭液1工作液的配制取12ml的10blocking solution（vial 6）用马来酸buffer稀释至120ml。抗体溶液的配制每次使用前Anti-Digoxigenin-AP（vial 4）10000rpm离心5min，吸取4l上清加入20ml封闭液（1工作液）中。显色液的配制加200l的NBT/BCIP储存液（vial 5）（上清）于10ml的Detection buffer中。（避光）1 将杂交膜置于盛有100ml封闭液（Blocking solution）的培养皿中，室温缓慢摇动30min。2 转到盛有20ml抗体溶液（Antibody solution）的培养皿中，室温缓慢摇动30min。3 在100ml的Washing buffer中洗膜215min，缓慢振荡。4 在20ml检测缓冲液(Detection buffer)中平衡2-5min，缓慢摇动。5 用新配制的10ml显色液温浴膜,黑暗静置（37 培养箱）至出现明显条带（3h20 h）。6 用50ml TE buffer洗膜5min停止显色，白光拍照记录。Southern boltting 试剂配置1.变性液； 87.75g NaCl, 20.0g NaOH加水至1L2.转膜液20SSC175.3gNaCl, 88.2g柠檬酸钠,用浓盐酸调节pH至7.0,定容到1L3.中和液：175.5gNaCl, 60.55g Tris 调节pH至7.4加水至1L,4. Maleic Acid buffer 11.61gMaleic Acid , 8.775g NaCl， 固体NaOH调PH至7.5加水至1L5. Washing buffer 11.61gMaleic Acid , 8.775g NaCl， 固体NaOH调PH至7.5， 加入0.3%Tween20 过滤灭菌总量至1L4 Detection buffer: 0.1M Tris 0.1M NaCl，PH：9.5