检验标本采集注意事项

单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,检验科标本采集与质量控制,医学检验科,夏 云,标本采集总则,标本采集是实验室分析前质量控制中最重要的环节，最新研究表明分析质量缺陷大多数是由标本采集过程的不规范引起，因此在标本采集过程中应注意下列事项：,1.,了解标本采集前影响结果的非病理性因素，如饮食、标本采集时间、体位和体力活动、病人用药等对检验结果的影响，取得患者的配合，正确地进行,病人准备,。,2.,认真,执行查对制度,，核对病人信息、医嘱，选择恰当的容器，用扫描器扫描标本条码，系统自动记录采样人和时间登记确认；注意打印送检清单。,3,、按相应标本采集的作业指导书采取适当的样品量，尽可能,采集病变明显部位的材料,；,4,、微生物培养标本应尽量,在应用抗生素之前采集,，并注意避免正常菌群的污染；,5,、标本采集后应尽快送检（,2,小时内）；,6,、遵守生物安全防护的要求。,常规检验项目真空采血管的选择,真空采血管种类,检测项目,采血要求,橘红色盖,平诊生化项目,4ml,红色盖,免疫项目：病毒性肝炎标志物、自身抗体、梅毒等,4ml,灰色盖,血糖、葡萄糖耐糖试验,2ml,，立即颠倒混匀,紫色盖（,K2EDTA,抗凝管）,血常规、网织红细胞、疟原虫、微丝蚴、脑脊液常规、胸腹水常规等,顺畅采血,1ml,，立即颠倒混匀,10,次,蓝色盖短管（枸橼酸钠抗凝管）,凝血象、,DIC,全套、血沉,采血至刻度，颠倒混匀,绿色盖（肝素钠抗凝管）,急诊生化、超级淋巴细胞亚群,采血至刻度，颠倒混匀,采血多管样本的采集顺序,血培养,蓝盖,红盖,橘黄盖,绿盖,紫盖,灰盖,血培养,常见标本采集,1.,静脉血采集,：,按静脉穿刺标准操作；,2.,动脉血采集,：,选择股动脉、肱动脉或桡动脉穿刺点，经皮肤消毒后，用动脉采集专用针穿刺动脉血管，当动脉血压力推动空针活塞采集所需动脉血后（血气分析,2-3ml,）。用小橡皮封针头并立即拔出针头，用绿头盖密封注射器以隔绝空气，立即将,注射器放在手中双手来回搓动混匀防止凝固,，并立即送检。,3.浆膜腔积液、脑脊液采集：,由医生操作，,采集标本分三管留取，每管-ml。,第一管：供细菌学检查，必须置于无菌管中；,第二管：供化学及免疫学检查（红色或橘红色盖真空负压试管中）；,第三管：供细胞学检查（置于紫色盖的真空负压试管中）,4.,尿液采集：应清洁外阴和尿道口，留取新鲜中段尿，以清晨第一次尿,5-10ml,为宜。急诊和门诊病人可随时留取中段尿。,应避免经血、白带、精液、粪便等混入；,尿培养项目应用无菌容器；,标本采集后立即送检，避免细菌繁殖、细胞溶解等；,5.大便采集：选取脓血黏液等不正常大便约5克（指头大小）立即送检。,检查阿米巴滋养体，应排便后迅速送检。冬季需采取保温措施；,大便细菌检验用标本应全部用无菌操作收集。,临床常见检验项目,标本采集的注意事项,血常规、血沉检验,1.,用紫色头（血常规）、黑色头（血沉）真空负压管采集空腹静脉血至,2ml,。采集后尽快送检；,2.,采血后轻轻颠倒混匀,8-10,次，,让血液与抗凝剂充分混合。避免剧烈振摇，防止标本溶血；,3.,标本采集时不能从输液管中放血，也不能在输液部位的同侧静脉采血；,4.,标本室温保存不得大于,4,小时；,5.,采血前应使患者尽量减少运动以保持平静,。,网织红细胞、疟原虫、微丝蚴,1.用紫色头真空负压管采集静脉血至2ml，采血后轻轻颠倒混匀8-10次尽快送检；,2.微丝蚴采血时间以,夜间21：00-24：00时,前后为宜；,3.疟原虫检查采集时间：疑为间日疟及三日疟患者，应在发作后数小时至10小时左右采血；疑为恶性疟患者，应在发作后20小时左右采血。,凝血试验,1.,用蓝色头真空负压管采集空腹静脉血至血液不能自行流出为止；,2.,采血后应充分混匀（颠倒混匀十次），避免剧烈振摇，避免有凝块和组织液的渗入；,3.,标本量不准确对结果有影响；,4.,严重贫血或细胞比例过多的病人，需校正采血量（与检验科联系）。,血流变,绿色的真空负压管采集空腹脉血,4ml,，轻轻颠倒混匀，人体血液黏度存在波动性和昼夜节律性，为使检测结果具有可比性，建议在固定时间抽血。,尿液标本量收集不足（右侧）,临床化学,/,免疫检测项目,1.,避免溶血、脂血；,2.,部分药物、严重黄疸可影响检测结果；,3.,不能从输液管中或输液的同侧采集；,4.24,小时尿检测：上午,8,时排尿一次，将膀胱排空，弃去尿，此后收集各次排出的尿，于,4,保存,。直到次日上午,8,时最后一次排尿的全部尿，混匀后，收集,5-10 ml,于清洁容器内，并注明尿量。,急诊标本的采集,急诊标本的试管上应贴上红色,“急”,字标签；,急诊标本采集后应立即送检。,临床微生物标本采集的原则,1.,抗生素应用前采集最好；,2.,选择正确的解剖部位，避免常居菌群随时可能造成的污染，以确保取得反映感染病程的典型标本；,3.,正确的无菌容器盛装，勿冷藏，冷冻，及时送检（,1,小时内）；,4.,标本要足量。,血液培养,1.,双瓶（需氧、厌氧）双套；,2.,不同部位同时采集；,3.,每瓶采血量,8-10ml,，不低于,5ml,；骨髓采血量一般为,1,2ml,；,4.,严格执行皮肤消毒程序，避免污染；,5.,不可由导管抽取血液。,痰培养标本,1.,以晨痰为好，多数病人清晨痰较多，易于采集。且清晨痰含有的病理成分较多。会增加培养的阳性率；,2.,先用清水或漱口液反复漱口（为减少口腔正常菌群污染标本），然后用力自气管中咳出第一口痰于无菌容器内。,标本量应,lml,。,不能及时送检的标本，,室温保存,2h,。,尿培养标本,清洁中段尿,：,晨尿最好，睡前少饮水，起床后用肥皂水清洗会阴部，女性应用手分开大阴唇，男性应翻上包皮，仔细清洗，再用清水冲洗尿道口周围；开始排尿，将前段尿排去，中段尿约,10,20 ml,直接排入专用的无菌容器中，立即送检。,分泌物标本,1.,开放性感染和已溃破的化脓灶：先用灭菌生理盐水冲洗表面的污染菌，用灭菌拭子采取脓液及病灶深部的分泌物。注意尽量取化脓组织与正常组织交界处的脓汁，会提高阳性率。,拭子是一切合格手段中最不好的一种。,2.,闭锁性脓肿：一般采用穿刺或手术引流的方法采取,.,采集前先用,2.5-3%,的碘酊和,75%,的酒精消毒周围皮肤。,分子生物学及流式细胞,1.,静脉采血同临床化学要求；,2.,其他标本应注意无菌操作，避免污染。,关注标本采集手册（检验科、护理部、医务处），正确进行标本采集，保证分析前质量。,谢谢,