血培养操作指南

v1.0 可编辑可修改山东省立医院血培养操作指南当微生物侵入血液迅速繁殖超出机体免疫系统清除这些微生物的能力时形成菌血症或真菌血症（统称血流感染），并可感染血管外组织, 临床上应该进行急症处理,应尽快采集血液进行培养。血培养是采集患者血液标本并接种到培养瓶中，用以发现、识别引起菌血症或真菌血症的病原微生物，是诊断菌血症和真菌血症的基本而重要的方法。血培养结果对感染性疾病的诊断、治疗和预后 都有极为重要的临床意义。1.标本的采集和运送血培养的临床指征（须 100%送检率）：1.1.1 发热（38 ）或低温（36 ）伴下列一项：A 寒战；B 肺炎；C 留置导管超过 5 天；D 白细胞万/mm3;；E 感染性心内膜炎；F 收缩压低于 90mmHg；G 无其他原因可以解释的感染；H PCT 或 CRP 升高；1.1.2 发热 注意事项：1、 怀疑脑膜炎患者应同时进行血培养；2、 对新生儿可疑菌血症,还应同时做尿液和脑脊液培养。3、 老年菌血症患者可能不发热或体温不低，如伴有身体不适、肌痛或卒中，可能是感 染性心内膜炎的重要指征。1.1.2 血培养的标本采集时机：只要怀疑患者有血流感染的可能，在考虑使用抗菌药物之前，都应立即采集血培养标本。若患者已行抗菌药物治疗，则应选择含有抗菌药物吸附物的培养瓶，并在下一次抗菌药物应用前采血培养。细菌通常在寒战和发烧前 1 小时入血，此时为采集血培养标本进行病原菌培养的最佳时机。 1v1.0 可编辑可修改1.1.3 血培养的次数：要求：对怀疑菌血症、真菌血症的患者，推荐同时或短时间间隔（10 分钟内）从不同部位（如双臂）采集 23 套血培养标本，做到“双瓶双侧”。如有必要，可同时或短时间间隔内从 下肢静脉采血接种第三套培养瓶。在采集血培养后的 2 至 5 天内，不需要重复采集血培养只有在疑似感染性心内膜炎或导管相关性感染患者的连续性菌血症时在不同时间点采 血才有必要。说明：以一个需氧瓶和一个厌氧瓶为一套血培养，作为常规血培养组合。所谓“双瓶双侧”，是指从一个部位采血接种一套培养瓶，再从另一部位采血接种另一套培养瓶。一次静脉采血 注入到多个培养瓶中应视为单个血培养。血培养的采血量：要求：成年患者推荐的采血量为 2030ml,每瓶 5ml10ml。婴幼儿患者推荐的采血量应少于患儿总血容量的 1%，每瓶不少于 2ml。血培养采血量要根据患 儿的血容量和年龄确定：A 新生儿：只需做一侧需氧培养，即单瓶需氧瓶抽取；B 体重 813Kg：只需做一侧需氧培养，即单瓶需氧瓶抽取:35ml；C 体重 1336Kg：需做两侧需氧培养，每瓶需氧瓶抽取:35ml；D 体重36Kg：需做到“双瓶双侧”抽取血培养，每瓶抽取:510ml；1.1.5 血液标本在需氧瓶和厌氧瓶中的分配要求：以一个需氧瓶和一个厌氧瓶为一套血培养，作为常规血培养的组合。当采血量不 够推荐的采血量时，应首先满足需氧瓶，剩余标本再接种入厌氧瓶。血培养标本的采集1.2.1 皮肤消毒与防止血培养污染要求：使用碘伏、碘酊、次氯酸或异丙醇作为血培养的皮肤消毒剂，以下为各种消毒剂 的种类及消毒方法：种类碘酒葡萄糖酸氯已定常用浓度2-4%消毒时间30 秒30 秒过敏有无要清除是不必婴儿2 月不能用2v1.0 可编辑可修改次氯酸碘伏异丙醇、乙醇70-80%90 秒30 秒有有不必是不必1.2.2 标本采集部位要求：从两侧上肢静脉采血，“双瓶双侧”采血培养。必要时从下肢静脉采血做第三套血培 养。说明：不建议采集动脉血，其诊断价值不高，且增加了抽血污染的机会。尽量避免从静脉留置导管采血培养，因其常伴有高污染率。如果必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采集另 外一个血培养标本以帮助阳性结果的判读。减少血培养污染的注意事项要求：采血之前，血培养瓶的橡皮塞需使用 70%异丙醇酒精消毒并干燥，然后再进行穿刺部 位的皮肤消毒。严格按照所述皮肤消毒方法操作，并等待足够消毒时间。严格无菌操作，医护人员采集标本前应严格洗手，不允许在皮肤消毒后用手接触待穿刺部 位。不推荐采血后更换注射器针头接种血培养瓶，采用真空采血装置能降低污染率。说明：无论采用何种采血方法，血培养可接受的污染率通常是3%。血培养标本的运送要求：采血后应该立即送检。如不能立即送检，需室温保存，切勿冷藏。 标本接种到 培养瓶后,需轻轻颠倒混匀以防血液凝固。说明：血培养瓶在接种前、接种后均不得冷藏或冷冻，否则会导致某些病原微生物死亡。 接种后的培养瓶最好立即送到实验室，最迟不能超过 2 小时。血培养标本的拒收标准、遇到下列血培养标本应拒收并且要求重新采集标本：1. 血培养瓶上贴的标签错误或未贴标签。2. 血培养瓶渗漏、破裂或明显污染。3v1.0 可编辑可修改3.血液凝固。2. 几种特殊要求的血培养导管相关的血流感染（CRBSI）2.3.1 短期外周导管要求：通过静脉穿刺获得病人的两套外周血培养（双瓶双侧）。无菌操作拔出导管并用 Maki 半定量方法培养。说明：Maki 半定量法是先用 75%酒精清洁导管周围皮肤，然后无菌移动导管，剪取导管末端 5cm 置于无菌容器中，立即送至实验室（为防止干燥，常规培养送检时间不得超过15min，4 保存不得超过 2 小时）。培养结果的解释：a 如果一套或多套血培养阳性，导管片段培养也是阳性（半定量15 个菌落），并且 为同一种菌：提示导管相关血流感染（CRBSI）。b 如果一套或多套血培养阳性，而导管片段培养阴性：不能确定为 CRBSI；但如果培养 出的是金黄色葡萄球菌或假丝酵母菌，而且能排除其他来源的感染，则提示 CRBSI。c 如果血培养阴性，而导管片段培养阳性，提示是微生物在导管表面定植而非 CRBSI。 d 如果血培养阴性，导管片段培养也是阴性，则不可能是 CRBSI。2.3.2 中心静脉导管及静脉留置口（VAP）有两种方法，其中方法一适用于想保留导管的患者，如果已经决定要拔除导管，则 方法二更合适。方法一：对疑似 CRBSI 的患者至少需要采集两套血培养，其中至少一套标本来自外周静脉（注意做好标记），另一套血培养标本需同时或短时间间隔内从导管口或VAP 隔膜无菌操作采集 （注意做好标记）。培养结果的解释：a 如果两套血培养均阳性，通过菌种鉴定和药敏试验结果比对确定为同一株微生物，并 且缺乏其他感染的证据，提示为 CRBSIb 如果两套血培养均为阳性，来自导管的血培养的细菌数量（CFU/ml）是外周静脉血培养的 5 倍以上，并且缺乏其他感染的证据，提示可能为 CRBSI(适用于手工定量血培养系统，比如裂4v1.0 可编辑可修改解-离心浓缩法) 。c 如果仅有导管的血培养为阳性：不能确定为 CRBSI，提示为导管定植菌或标本采集过 程中的污染菌。d 如果仅有来自外周静脉的血培养为阳性，不能确定为 CRBSI，但是如果培养出的微生物是金黄色葡萄球菌或假丝酵母菌，并且缺乏其他感染的证据，则提示可能为 CRBSI。确定为 CRBSI 还需要定量或半定量导管片段培养出相同微生物。e 如果两套血培养均为阴性，则不会是 CRBSI方法二：通过独立的外周静脉穿刺无菌采集两套血培养；拔出可疑导管，剪取5cm 的导 管远端的片段送实验室进行 Makis 半定量培养或振荡/超声后定量培养。培养结果的解释：a 如果一套或多套血培养阳性，同时导管末端培养阳性，而且通过菌种鉴定和药敏试验 结果比对确定为同一株微生物，则很可能是 CRBSI 。b 如果一套或多套血培养阳性，而导管末端培养为阴性，如果培养出的微生物是金黄色葡萄球菌或假丝酵母菌，并且缺乏其他感染的证据，则提示可能为 CRBSI。确定为 CRBSI 还需其他 结果支持。c 如果血培养阴性而导管末端培养阳性，提示为导管定植菌，不是 CRBSI。d 如果血培养和导管末端培养均为阴性，则不会是 CRBSI。感染性细菌性心内膜炎血培养结果对感染性心内膜炎的诊断和治疗非常重要。如果采用较理想的血培养技术，90%以上感染性心内膜炎患者能获得阳性血培养结果。以下为适用于感染性心内膜炎诊断的特殊规 定。血培养的采集时机对于可能的心内膜炎患者，起始采集 3 套血培养，如果在 24 小时仍报告为阴性，则继 续连续采集 2 套血培养，一共采集 5 套血培养。a 急性感染性心内膜炎：要求：在经验性抗生素治疗前 30min 之内采血培养（12 小时内操作完毕）。说明：对于疑似或已知高毒力病原菌（如金黄色葡萄球菌）所致感染性心内膜炎患者，5v1.0 可编辑可修改需要在第一时间立即采血培养以避免治疗上不必要的延误。b 亚急性感染性心内膜炎：要求：每隔 15min 左右收集血液，采集数套血培养。说明：适当的时间间隔有助于证明为持续性菌血症，尤其是当心电图正常或模棱两可时 具有更高的临床价值。对疑似亚急性感染性心内膜炎的患者，不一定必须在经验性抗生素治疗前采血培养，对这些患者，尝试确定微生物学诊断更为重要。由于大多数感染性心内膜炎患者菌血症持续存在，使 血培养的时间选择相对不是那么重要。需要的血培养数量对于可能的心内膜炎患者，起始采集 3 套血培养，如果在 24 小时仍报告为阴性，则继 续连续采集 2 套血培养，一共采集 5 套血培养。检验科细菌室2015 年 4 月 30 日6