PCR产物胶回收实验

上传人:xgs****56 文档编号:9759993 上传时间:2020-04-07 格式:DOCX 页数:3 大小:15.98KB
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资源描述
实验六 PCR产物胶回收实验一、实验目的1. 掌握胶回收的常规操作2. 了解胶回收PCR产物的目的二、实验原理利用胶回收试剂盒纯化PCR产物。本试剂盒提供一个从TBE或TAE电泳缓冲液配制的琼脂糖凝胶中提取高质量DNA的简单、快速、有效的技术,适合从浓度3%,高,低熔点琼脂糖凝胶中,回收长度为60bp23Kb的DNA片段,小于100bpDNA片段回收率为10%55%,0.110kbDNA片段回收率最大为99%,大于10kbDNA片段回收率为2070%。回收的基因组DNA可以应用到克隆,测序,限制性酶切等各类下游分子生物学实验。三、试剂及配套设备和材料3.1 试剂Extraction buffer Wash buffer Elution buffer3.2 配套设备和材料无菌1.5ml离心管 各种规格移液器和无菌移液器吸头无水乙醇 异丙醇 可能需要3M KAc (pH 5.0) 离心机四、基本技术参数提取方法操作时间离心柱溶剂提取DNA片段范围洗脱液回收率样本用量离心柱16分钟内完成2个样本750ul60bp23kb99%最大400mg凝胶条适用琼脂糖种类适用电泳缓冲液温育温度高/低熔点琼脂糖TAE/TBE缓冲液50(低熔点琼脂糖)55(普通琼脂糖)五、操作步骤1. 用干净、锋利的手术刀,将含有目的DNA片段的琼脂糖凝胶切下,并放入1.5或2.0 ml离心管中。 请尽量切去不包含DNA片段的凝胶。一般情况下,电泳的DNA上样量50 ul(50ul为最终洗脱体积)。2. 按1:3的比例(凝胶质量毫克数:融胶液体积微升数)加入Extraction buffer。 例如:100mg凝胶应加入300ul Extraction Buffer。对于每人份试剂用量,凝胶质量不能超过400mg。3. 于恒温水浴或金属浴中50温育,直到凝胶融化。 一般温育时间为10分钟,温育过程中没隔2-3分钟混匀一次。如果温育后,混合液体颜色变紫,请加入10 ul 3M KAc (pH 5.0),使混合液颜色变回黄色。4. 可选:按1:1的比例(凝胶质量毫克数:异丙醇体积微升数)加入异丙醇,并混合均匀。 如DNA片段大于500bp/小于4kb,不需要加异丙醇。5. 将混合液全部转移到Spin column内,于6,000g离心1分钟,并弃去接液管内液体。 如混合液体积大于750ul可先转移750ul,其余的液体待离心弃液后,再转移。6. 向Spin column内加500ul Extraction Buffer,于12,000g离心3060秒,并弃去接液管内液体。7. 向Spin column内加750ul Wash Buffer,于12,000g离心3060秒,并弃去接液管内液体。 如果回收的DNA片段将用于盐浓度敏感的实验,请在加入Wash buffer后静置25分钟,再离心。8. 再次于12,000 rpm离心1分钟,然后将spin column转移到无菌的1.5ml离心管中。 如不进行该步离心,则无法保证离心柱内残液被彻底清除。9. 向Spin column内加50ul Elution Buffer、水或TE溶液,并于室温静置1分钟。 可根据实验的实际需要决定Elution Buffer用量。但不要低于20ul。10. 于12,000g离心1分钟,微量离心管内溶液中含有目的DNA片段。 回收的DNA可直接用于各类下游分子生物学实验,如果不立即使用,请保存于-20。六、注意事项1. 为了保证没有外源DNA的污染,电泳的buffer和gel都是新制的,切胶的台子清理干净,刀片最好洗净灭菌。2. 为了减少胶的体积,我们可以用相对比较薄的胶来跑电泳,这样可以减少回收试剂引起的一些后续麻烦。2. 在洗脱前,将洗脱液于3060温浴,可提高提取效率。七、思考题1. 简述影响DNA在琼脂糖凝胶中迁移速率的因素。2. 简述PCR上样缓冲液(loading buffer)的成分及其作用。
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