Westernblot实验操作步骤.doc

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资源描述
Western blot实验步骤一、 制备蛋白样品(单层贴壁细胞总蛋白提取)1.倒掉细胞培养液,加3ml预冷的PBS洗涤细胞,重复两次,弃掉PBS后将细胞培养瓶置于冰上。2.裂解液RIPA(强)1ml +PMSF10ul(100:1),两者混匀后加入培养瓶中裂解细胞,冰上裂解30min,为使细胞充分裂解,培养瓶要经常来回摇动。3.裂解完后,用细胞刮将细胞刮于一侧(动作要快),转移至ep管中.4.4度,12000rpm,离心5min.离心后取上清至新的ep管中,用于后续实验(-80保存) 常用蛋白收样:倒掉细胞培养基后,预冷PBS洗涤细胞2次,弃去,再加入1ml PBS,用细胞刮轻轻刮取细胞,转移至1.5ml ep管中,12000rpm,离心5min,尽量吸净上清,沉淀于-80保存,用于后续实验。 融化蛋白样品,加入RIPA+PMSF细胞裂解液(200ul/ep管),充分混匀,冰上裂解20min,4度离心,5min ,12000rpm,小心吸取上清至新的ep管中。二、蛋白浓度测定(BCA法)BCA(碧云天)蛋白浓度测定试剂盒灵敏度高,检测浓度下限达到25ug/ml,最小检测蛋白量达到0.5ug,待测样品体积为1-20ul。 在50-2000ug/ml浓度范围内有较好的线性关系。标准蛋白BSA浓度:5mg/ml (-20保存) ,完全溶解蛋白标准品,取10ul稀释至100ul,使终浓度为0.5mg/ml(ug/ul)。蛋白样品在什么溶液中,标准品也宜用什么溶液稀释。但为了简便起见,也可以用0.9%NaCl或PBS稀释标准品。1. 配置BCA工作液 A液 : B液= 50 : 1 ,混匀 A液+B液=200ul (每个样本)样本数量: 7个标准品 + N 个待测蛋白样本2. 先将每孔加入200ul BCA工作液,再加入蛋白样本。(96孔板),总体积为10ul.待测蛋白样本先10倍稀释。96孔编号#1#2#3#4#5#6#7BSA标准蛋白0ul1ul2ul4ul6ul8ul10ulddH2O10ul9ul8ul6ul4ul2ul0ul96孔待测蛋白样本1待测蛋白样本2待测蛋白样本3待测蛋白样本N10ul/well3.37度,温箱中孵育30min。562nm波长,测OD值。待测蛋白样品浓度在50-2000ug/ml浓度范围内有较好的线性关系。4.根据所测样品的OD值,绘制标准曲线。根据标准曲线即可计算样本相应的蛋白含量,除以样本稀释液总体积(10ul),再乘以样本稀释倍数,即为样本的实际浓度(ug/ul)5.蛋白定量后,以最小蛋白浓度为标准,将各组蛋白样本调至相同浓度(ddH2O补齐)绘制标准曲线:X轴为蛋白质量,Y为OD值 插入XY散点图,选中图上一点,右键,添加趋势线选项(显示公式,显示R2,R20.99有意义)三、蛋白变性1.室温融解SDS-PAGE蛋白上样缓冲液(溴酚蓝染料)(2x 或 5x)2.将适量蛋白样本与SDS-PAGE上样缓冲液混合,使其终浓度为1x3.100度或沸水煮3-5min,充分变性蛋白。冷却至室温后,直接上样到SDS-PAGE胶加样孔内即可。或冷却后-80保存用于后续实验。四、蛋白电泳1配胶:根据配胶试剂盒操作步骤,按照目的蛋白分子量大小,选择相应浓度的分离胶。配胶时最后加10%过硫酸铵和TEMED.每板分离胶5ml,浓缩胶3ml.短板在内侧。配好后如暂时不用,可将胶板取下,电泳液中浸泡,4度保存。2.配电泳液 1x 甘氨酸-Tris电泳缓冲液1L Tris 3.03g 甘氨酸 14.4g SDS 1g3.蛋白上样: 样本10-30ul(保证蛋白质量最少为30ug) 20-25ul 蛋白Marker 5ul 选择较好的孔加样,并记录加样位置4.连接电极,跑电泳:电泳条件 80V,30min(蓝色条带到达浓缩胶底部)-110V,90min(参考Marker的位置,蓝色条带跑到胶底部即可)五、转膜1.配转膜液:1L Tris 3.03g 甘氨酸14.4g,加水至800ml,最后加甲醇200ml,调至总体积为1L.2.切胶: 起胶时将胶留在长玻璃板上,将裁减好的膜做好标记后浸泡在转膜液中。确定目的蛋白的位置(根据Marker条带),切胶,保留目的蛋白位置,将膜置于胶上,膜数字面在上,背面与胶相贴,数字标记端贴在Marker上。3. 准备转膜:按如下顺序阳极(红)滤纸膜胶_滤纸阴极(黑)4. 连接电极,转膜: 90V,90min六、封闭1.配封闭液:0.5g 脱脂奶粉 + 10ml PBS2.取下膜,注意蛋白在膜与胶贴合的一面,取下后将膜有蛋白面朝下,封闭1小时七、抗体孵育配抗体稀释液:0.5g 脱脂奶粉,10ul Tween, 10ml PBS配洗膜液:100ul Tween + 100ml PBS一抗孵育,4度过夜次日,洗膜液洗4次,每次5min,注意将有蛋白面朝下。孵育二抗,避光,30-60min(一般不超过60min),避光,洗膜4次,每次5min,将有蛋白面朝下。 PBS冲洗一次,洗掉Tween.准备扫描,将膜上有蛋白的一面朝下。
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