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单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,碱性磷酸酶(AKP)的分离纯化,实验目的:,从兔肝中提取碱性磷酸酶的实验,培养同学综合运用有机溶剂沉淀、离心、分光等方法,从组织中分离纯化及鉴定特定蛋白质的技能。,实验原理:,采用有机溶剂分步沉淀法,从兔肝中提取碱性磷酸酶。,AKP溶于,30%乙醇或33%丙酮,。但在,60%的乙醇或50%丙酮,中则形成沉淀。通过离心可以使AKP和其他蛋白分离,从而得到纯化。,反复进行纯化的操作,可以获得较高纯度的AKP。,有机溶剂沉淀,概念:在含有溶质的水溶液中加入一定量亲水的有机溶剂,降低溶质的溶解度,使其沉淀析出,。,原理,:,(1),降低了溶质的介电常数,使溶质之间的静电引力增加,从而出现聚集现象,导致沉淀。,(2),由于有机溶剂的水合作用,降低了自由水的浓度,降低了亲水溶质表面水化层的厚度,降低了亲水性,导致脱水凝聚,。,常用的有机溶剂沉析剂,乙醇:沉析作用强,挥发性适中,无毒常用于蛋白质、核酸、多糖等生物大分子的沉析;,丙酮:沉析作用更强,用量省,但毒性大,应用范围不广;,特点:,介电常数小:60%乙醇的介电常数是48,丙酮的介电常数是22,容易获取,有机溶剂沉析的特点,分辨率高;,溶剂容易分离,并可回收使用;,产品洁净;,容易使蛋白质等生物大分子失活;,应注意在低温下操作;,影响有机溶剂沉析的主要因素,温度:低温有利于防止溶质变性;有利于提高收率(溶解度下降);,搅拌速度:散热,溶液,pH,值:原则是避免目标蛋白与杂质带有相反的电荷,防止共沉现象。(pI),离子强度:离子强度低有利于沉析,0.010.05mol/L,样品浓度:0.52%,稀:溶剂用量大,回收率低,但共沉淀作用小,浓:节省溶剂用量,共沉作用强,分辨率低,金属离子的助沉析作用:Zn,2+,、Ca,2+,1.称取兔肝,2g,剪碎后置于玻璃匀浆器中,加入0.01 M的醋酸镁及醋酸钠混合液,4ml,进行匀浆。转入离心管,并加,2ml,0.01 M的醋酸镁及醋酸钠混合液清洗匀浆器,之后将之倒入离心管,与原来的匀浆液混合。记录,体积a,,取0.1ml作为,A液,于EP管,待测比活性用。,在离心管中剩余的液体加入,2ml,正丁醇,玻璃棒搅拌,2min,,室温放置,30min,,纱布过滤,置于离心管。,滤液加入,等体积的冷丙酮,,边倒边摇,混匀后,3000r/min 5min,。,弃上清,,沉淀用,4ml 0.5M Mg(AC),2,溶解。记录,体积,b,。取,0.1ml,作为,B,液,于,EP,管,待测比活性用。,4.,(1),于悬液中,缓慢,加入冷95%乙醇使其终体积为30%(,0.46体积,),混匀后2000r/min 5min,转移,上清,于另一离心管。,(2),上清液中,缓慢,加入冷95%乙醇使其终体积为60%(,0.85体积,),混匀后3000r/min 5min,,弃上清,,沉淀用4ml 0.01M Mg(AC),2、,NaAC混合液搅拌混悬。,5.,(1),于悬液中,缓慢,加入冷95%乙醇使其终体积为30%(,0.46体积,),混匀后2000r/min 5min,转移,上清,于离心管,弃沉淀。,(2),上清液中,缓慢,加入冷95%乙醇使其终体积为60%(,0.85体积,),混匀后3000r/min 5min,,弃上清,,沉淀用3ml 0.5M Mg(AC),2,溶解,记录,体积c,。取0.1ml作为,C液,于EP管,待测比活性用。,6.,(1),其余悬液中,缓慢,加入冷丙酮,使得丙酮的体积分数达到33%(0.5体积),混匀后2000r/min 离心5min,,取上清,(弃沉淀),(2),上清中,缓慢,加入冷丙酮,使丙酮终体积分数达到50%(0.34体积),混匀后3000r/min离心15min,,弃上清,(3),沉淀中加入Tris-醋酸镁缓冲液5ml,即为纯化酶液。作为,D液,用于比活性测定。,用于活性测定:,用Tris-Mg(AC),2,缓冲液将,A液稀释25倍、B液稀释10倍、C液稀释5倍,D液不稀释。,用于含量测定,:用Tris-Mg(AC),2,缓冲液将,A液稀释50倍、B液稀释20倍、C液稀释5倍,D液不稀释。,(二)碱性磷酸酶的活性测定,实验原理:,AKP是一种底物特异性较低,在碱性环境中能水解磷酸基团。最适,pH,范围为8.810,需要镁离子作为激活剂。,血清AKP主要来自肝,小部分来自骨骼。,酶的活性通常是在一定条件下(最适温度、最适的pH、必要的激动剂等),一定的时间内,测定该酶所催化的反应系统中底物的消耗量或产物的生成量来确定。,磷酸苯二钠,磷酸盐 +,酚,AKP,酚 +4-氨基安替比林,红色醌类衍生物,铁氰化钾,管号 空白 标准 A B C D,酶液体 0.1 0.1 0.1 0.1,酚标准液 0.1,Tris-Mg(AC),2,0.1,复合底物 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0,1.取试管6支编号(体积单位为ml),2.加入底物后,立即混匀,37,准确15 min后加入0.5%,铁氰化钾2.0 ml终止反应,混匀,静置15 min,510 nm,比色,(大比色杯),AKP纯化程度鉴定,AKP纯化程度用酶的比活性反映。,酶的比活性是指单位浓度的酶蛋白样品中的酶活性。,BCA法测定AKP蛋白浓度,BCA(bicinchoninic acid,二喹啉甲酸),Protein+Cu,2+,OH,-,Cu,+,BCA 试剂,紫色复合物,(三)碱性磷酸酶的蛋白含量测定,管号 空白 标准 A B C D,酶液体 0.1 0.1 0.1 0.1,蛋白标准液 0.1,Tris-Mg(AC),2,0.1,BCA试剂,1.5 1.5 1.5 1.5 1.5 1.5,1.取试管6支编号,(体积单位为ml),2.混匀后37,水浴30min,562nm比色(,小比色杯),管号 空白 标准 A B C D,酶液体 0.1 0.1 0.1 0.1,酚标准液 0.1,Tris-Mg(AC),2,0.1,复合底物 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0,管号 空白 标准 A B C D,酶液体 0.1 0.1 0.1 0.1,蛋白标准液 0.1,Tris-Mg(AC),2,0.1,BCA试剂,1.5 1.5 1.5 1.5 1.5 1.5,1.取试管6支编号,(体积单位为ml)酶活性测定,2.取试管6支编号,(体积单位为ml)酶蛋白含量测定,管号 空白 标准 A B C D,酶液体 0.1 0.1 0.1 0.1,酚标准液 0.1,Tris-Mg(AC),2,0.1,复合底物 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0 3.0,1.取试管6支编号(体积单位为ml),2.加入底物后,立即混匀,37,准确15 min后加入0.5%,铁氰化钾2.0 ml终止反应,混匀,静置15 min,510 nm,比色,(大比色杯),722S型分光光度计使用方法,开机预热,15min,以上(打开盖预热)。,转动波长选择钮,选用所需的波长。,将装有空白、标准、样品的比色杯放入比色杯架,使,空白管,对准光路。,按,MODE,键选择,trans,模式。,打开样品室暗箱盖(光门自动关闭),按,0%ADJ,键,即能自动进行机械零点的调整,数码显示为,0.000,。,盖好比色杯暗箱盖(光门自动开启),按,100%ADJ,键,即能自动进行空白零点的调整,数码显示为,100.0,。(一次如有误差可再按一次),按,MODE,键选择吸光度测定模式(,ABS,灯亮),数码显示自动转换为吸光度值,0.000,。,拉动比色杯架的拉杆,使测定杯进入光路,从数码显示上即可读出样品的吸光度,比色完毕后,关上电源开关,取出比色杯,将比色杯暗箱盖好,清洗比色杯并晾干。,分光光度计必须放置在固定而且不受振动的仪器台上,不能随意搬动,严防振动,潮湿和强光直射。分光光度计内放有硅胶干燥袋,需定期更换。,开机预热,15,分钟,待仪器稳定以后再开始进行测定。每年需定期进行波长校准。,必须保证测试样品为澄清的溶液,肉眼看不出来的轻微浊度也能引起读数的严重误差,必要时可通过离心来去除微粒。检测细菌培养液的光吸收时例外。,从冰箱中取出的样品一定要恢复到室温后再进行检测,否则低温会使水蒸汽在比色皿表面凝结,引起读数持续漂移上升。,使用分光光度计的注意事项,比色杯盛液量以达到杯容积,2/3,左右为宜。比色杯的外表面,则必须先用滤纸吸干,再用擦镜纸或绸布擦净,然后才能把比色杯放入比色杯槽内。移动比色杯槽要轻,以防溶液溅出,腐蚀机件。,不可用手拿比色杯的光学面,禁止用毛刷等物摩擦比色杯的光学面。用完比色杯后应立即用自来水冲洗,再用蒸馏水洗净,也可用甲醇冲洗。洗涤后应把比色杯倒置晾干或用滤纸条将水吸去,再用擦镜纸轻轻揩干。,一定要保证比色皿正确放入光路后再进行测量。,一般应把溶液浓度尽量控制在吸光度值,0.2,0.7,的范围内进行测定。这样所测得的读数误差较小。如吸光度不在此范围内,可调节样品溶液浓度,适当稀释或加浓,使其在仪器准确度较高的范围内进行测定。,A样,A标,标准管中酚含量,0.1mg/ml,稀释倍数,A样,A标,标准管中蛋白含量,0.2mg/ml,稀释倍数,酶活性单位计算:,蛋白质含量计算:,比活性计算,AKP比活性=,每毫升样品的酶活性单位,每毫升样品的蛋白毫克数,纯化倍数=,每步比活性,初提液比活性(A液体),总活力=酶活性单位体积,得率=,每步总活力,初提液总活力(A液体),分离,阶段,蛋白质,mg/ml,酶活性,U/ml,比活性,U/mg,纯化,倍数,得率,A,B,C,D,
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