第四组SDS-PAGE测定酶

上传人:沈*** 文档编号:244398421 上传时间:2024-10-04 格式:PPT 页数:20 大小:242KB
返回 下载 相关 举报
第四组SDS-PAGE测定酶_第1页
第1页 / 共20页
第四组SDS-PAGE测定酶_第2页
第2页 / 共20页
第四组SDS-PAGE测定酶_第3页
第3页 / 共20页
点击查看更多>>
资源描述
单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,SDS-PAGE,测定酶,目录,一、实训目的,二、实训原理,三、实训材料,四、实训步骤,一、实训目的,掌握,SDS-PAGE,电泳技术的原理、凝胶配制等知识,能够熟练进行加样,能够正确使用电泳仪,二、实训原理,1.SDS-PAGE,分离样品的主要依据是各种物质分子量的差异性。当,SDS,与各种酶分子结合后,酶分子即带有大量的负电荷,并远远超过了其原来的电荷。因此在电泳时,电泳迁移仅取决于分子量大小而与其所带的电荷无关。,三、实训材料,1.,试剂,30,丙烯酰胺溶液,(,Acrylamide-Bis,),配置,100mL:29,克丙烯酰胺,,1,克甲叉双丙烯酰胺,置于,250mL,烧杯中,向烧杯中加入约,80mL,的去离子水,充分搅拌溶解,最后定溶,100mL,,置于棕色瓶,4,保存。,0.5moL/L,浓缩胶缓冲液,配置,100mL,:,6.0,克,Tris,,置于,100mL,烧杯中,加,80mL,去离子水搅拌溶解;用,HCl,调节,pH,值到,6.8,,加水混匀定容至,100mL,。,1.5moL/L,分离胶缓冲液,配置,100mL,:18.2,克,Tris,、,置于,100mL,烧杯中,加,80mL,去离子水搅拌溶解;用,HCl,调节,pH,值到,8.8,,加水混匀定容至,100,mL,。,5xTris-,甘氨酸电极缓冲液,组分浓度,0.125moL/L,Tris,,,1.25moL/L Glycine,0.5%(m/v)SDS,;,配置,1L,:,15.1,克,Tris,,,94,克甘氨酸、,5,克,SDS,,加水混匀定容至,1L,,室温保存,10,(,m/v,)过硫酸铵,配置,10mL,:,1,克过硫酸铵溶于,l0ml,蒸馏水中,临用前配制。,10,(,m/v,),SDS,配置,10mL:,配置方法同过硫酸铵,2x,样品处理液,组分,100mmol/L,Tris-HCl,(,Ph6.8,),,4%,(,m/v,),SDS,0.2,(,m/v,)溴酚兰,20%,(体积倍数)甘油,,2%,(,m/v,),-,巯基乙醇;,配置量,5mL,:取,1mol/L,Tris-HCl,(,Ph6.8,),0.5mL,,,SDS 0.2g,,溴酚蓝,10mg,,甘油,1mL,,加水溶解定溶至,5mL,。小份分装,,0.5mL,一管,室温保存。使用前将,25L,的,-,巯基乙醇加入混匀,考马斯亮蓝染色液,配置量,1000mL,:称取,0.125%,考马斯亮兰,R-250 1.25g,,,250mL,甲醇或乙醇,,80mL,乙酸,加蒸馏水补足,1000mL,。充分混匀后进行过滤,收集滤液备用。,脱色液,7,醋酸,蛋白质样品,46kda,的酶,其他试剂,15g/L,琼脂糖溶液(封胶用)(用,1x,Tris,-,甘氨酸电极缓冲液配置),2.,仪器,1.,电泳仪,2.,电泳槽及灌胶模具,3.,电炉,4.,微量移液器,5.,烧杯、量筒、摇床等,四、实训步骤,1.,准备工作,将垂直板型电泳装置的玻璃片洗干净,晾干,嵌入凹槽中,夹好。将电泳槽、凝胶模子串成一体的垂直板型电泳装置,垂直放置在水平台面上。,2.,分离胶的制备,按比例取试剂立即混匀,将混合液,迅速在电泳槽的两玻璃板之间灌注,留出灌注浓缩胶所需空间(梳子的齿长再加,0.51cm,)。用滴管小心地在溶液上覆盖一层蒸馏水,以隔绝空气中的氧气,并使胶面平整。将电泳槽垂直静置于室温约,1h,或更长,待分离胶聚合完全后(水封层和凝胶面之间会出现明显的水胶分界线),倾出覆盖的水,再用滤纸吸净残留水(注意勿将滤纸碰到胶面)。准备灌注浓缩胶。,3.,浓缩胶的制备,在聚合的分离胶上直接灌注浓缩胶,立即在浓缩胶溶液中插入干净的梳子,梳底距离分离胶至少有,0.51cm,。,4.,样品的处理,在待测酶样品中按,1:1,体积比加入,2,倍样品处理液,在,100,沸水中加热,35min,以使酶变性。另外选择相对分子量大小合适的标准蛋白质作为参照,并做同样处理。,5.,加样,待浓缩胶完全聚合后,小心移出梳齿,用电极缓冲液洗涤加样孔数次,然后将凝胶固定于电泳装置上,槽中加入,Tris,-,甘氨酸电极缓冲溶液。必须设法排出凝胶底部两玻璃板之间的气泡。用微量注射器向凝胶梳孔内加样,动作轻缓、准确、迅速,防止窜孔。,6.,电泳,接上电泳仪,上电极接电源的负极,下电极接电源的正极。电泳时,调节电流至,2030mA,并保持电流强度恒定。待蓝色的溴酚蓝条带迁移至距离凝胶下端约,1cm,时,关闭电源停止电泳。,7.,剥胶,电泳结束后小心从电泳装置上卸下玻璃板,将胶取出,注意凝胶的完整性。,8.,染色和脱色,经,SDS-,聚丙烯酰胺凝胶电泳分离的酶样品可用考马斯亮蓝,R250,染色。将凝胶完全浸入固定染色液中放摇床上,轻轻摇动使染色均匀,染色,12h,或过夜,至显出条带。染液收回,用水洗去凝胶表面染液,加脱色液脱色,需,310,小时,期间更换多次洗色液至背景无色。,9.,凝胶保存,可用,7%,醋酸或,20%,甘油保存,也可拍照、扫描或脱水制成干胶保存。,10,、相对分子质量的计算,10,、相对分子质量的计算,(,1,)电泳相对迁移率的计算,用直尺分别量出标准蛋白质、待测酶区带中心以及溴酚蓝距分离胶顶端的距离,按以下公式计算相对迁移率:,(,2,)标准曲线绘制,以各标准蛋白样品的相对迁移率为横坐标,其相对分子质量(,M,r,)的对数值为纵坐标,在坐标纸上作图,可拟合绘制一条标准曲线。,(,3,)待测酶样品相对分子质量的计算,根据待测酶样品的相对迁移率,从标准曲线上查出其相对分子质量的对数值,再进一步算出酶样品的相对分子质量。,分离胶,分离胶(单位,kD,),150,以上:,6%,;,100150,:,8%,;,50100,:,10%,;,2050,:,12%,;,20,以下:,16%,。,一般为这个范围,也可有些许的差异。,分离胶制备 (,12% 10ml),H,2,O 3.35ml,1.5M Tris(PH8.8) 2.5ml,10% SDS 0.1ml,Acr/Bis,4.0ml,10%,过硫酸铵,0.05ml,TEMED 0.005ml,浓缩胶制备 (,5% 5ml),H,2,O 3.6 ml,单体溶液(,30%,),0.62ml,1M Tris(PH6.8) 0.63ml,10% SDS 0.05ml,10%,过硫酸铵,0.05ml,TEMED 0.005ml,压缩胶一般都为,5%,;,谢谢观看,
展开阅读全文
相关资源
正为您匹配相似的精品文档
相关搜索

最新文档


当前位置:首页 > 管理文书 > 施工组织


copyright@ 2023-2025  zhuangpeitu.com 装配图网版权所有   联系电话:18123376007

备案号:ICP2024067431-1 川公网安备51140202000466号


本站为文档C2C交易模式,即用户上传的文档直接被用户下载,本站只是中间服务平台,本站所有文档下载所得的收益归上传人(含作者)所有。装配图网仅提供信息存储空间,仅对用户上传内容的表现方式做保护处理,对上载内容本身不做任何修改或编辑。若文档所含内容侵犯了您的版权或隐私,请立即通知装配图网,我们立即给予删除!