药理学实验课件

药理学实验药理学实验实验一实验一药理学实验的基础知识药理学实验的基础知识药理学实验实验一1考核方法考核方法一、实验操作考核占一、实验操作考核占10 小鼠小鼠 1.抓持抓持 2.灌胃灌胃 3.腹腔注射腹腔注射 4.皮下注射皮下注射 家兔：抓持家兔：抓持 剂量换算剂量换算二、自主探索性设计占总成绩的二、自主探索性设计占总成绩的60：1.实验准备考核及实验准备程度。占总成绩的实验准备考核及实验准备程度。占总成绩的102.实验基本操作的正确程度以及认真程度。占总成绩的实验基本操作的正确程度以及认真程度。占总成绩的202.平时实验报告的书写以及实验的成功率或者平时实验报告的书写以及实验的成功率或者失败分析失败分析。占总成绩的。占总成绩的30三、综合设计性实验占三、综合设计性实验占30：1.实验设计前准备及实验设计前准备及PPT制作，占制作，占10%2.实验实验报告，占实验实验报告，占10%3.自主实验操作，占自主实验操作，占10%考核方法一、实验操作考核占102实验具体扣分项目实验具体扣分项目o无故旷课（无故旷课（-5分）分）o上课迟到上课迟到2min（-2分）分）o实验不认真（玩手机、利用电脑娱乐等）（实验不认真（玩手机、利用电脑娱乐等）（-1分）分）o白大褂不穿（白大褂不穿（-1分）分）o数据造假（数据造假（-5分）分）o实验准备不充分，考试成绩实验准备不充分，考试成绩老年老年成年成年o如氯丙嗪对如氯丙嗪对1028周龄小鼠引起血糖升高，周龄小鼠引起血糖升高，对老年小鼠引起血糖降低对老年小鼠引起血糖降低o又如麦角新碱对又如麦角新碱对56周龄的雄性大鼠有镇痛周龄的雄性大鼠有镇痛效果，对该龄的雌性大鼠无镇痛效果效果，对该龄的雌性大鼠无镇痛效果实验动物的选择同一品系的实验动物，对同一刺激物反应存在着个体19药理实验的基本操作技术药理实验的基本操作技术1.1.实验动物的编号实验动物的编号2.2.实验动物性别的辨别实验动物性别的辨别3.3.实验动物的处死法实验动物的处死法4.4.实验动物的捉持与常用给药方法实验动物的捉持与常用给药方法5.5.实验动物给药量的计算实验动物给药量的计算药理实验的基本操作技术实验动物的编号20o可用可用35苦味酸溶苦味酸溶液（黄色）涂于大鼠、液（黄色）涂于大鼠、小鼠和兔皮毛不同部小鼠和兔皮毛不同部位以标号位以标号1.动物的编号动物的编号213456789可用35苦味酸溶液（黄色）涂于大鼠、小鼠和兔皮毛不同部位21o小鼠（左为雄性，右为雌性）小鼠（左为雄性，右为雌性）2.动物性别的辨别动物性别的辨别小鼠（左为雄性，右为雌性）2.动物性别的辨别223.实验动物的处死法实验动物的处死法o颈椎脱臼法颈椎脱臼法常用于小鼠。用左手拇指、食指常用于小鼠。用左手拇指、食指或镊子用力压住小鼠的后头部，同时用右手抓住或镊子用力压住小鼠的后头部，同时用右手抓住鼠尾用力向后上方牵拉，使之颈椎脱臼死亡。鼠尾用力向后上方牵拉，使之颈椎脱臼死亡。o空气栓塞法空气栓塞法常用于兔。用注射器将空气快速常用于兔。用注射器将空气快速注入静脉使动物死亡。注入静脉使动物死亡。o击打法击打法可用于兔、大鼠和小鼠等。提起动物可用于兔、大鼠和小鼠等。提起动物的尾部，用力敲击动物头部，或用用木锤打击头的尾部，用力敲击动物头部，或用用木锤打击头部，使动物死亡。部，使动物死亡。o断头法断头法用于小鼠和大鼠。用剪刀将动物头部用于小鼠和大鼠。用剪刀将动物头部剪断，由于脊髓离断且大量失血，使动物死亡。剪断，由于脊髓离断且大量失血，使动物死亡。3.实验动物的处死法颈椎脱臼法常用于小鼠。用左手拇指、234.实验动物的捉持与常用给药方法实验动物的捉持与常用给药方法4.实验动物的捉持与常用给药方法24o双手法：右手提鼠尾，放在鼠笼盖或粗糙面双手法：右手提鼠尾，放在鼠笼盖或粗糙面上，向后方轻拉鼠尾，使小鼠前肢固定在粗上，向后方轻拉鼠尾，使小鼠前肢固定在粗糙面上。迅速用左手拇指和食指捏其双耳间糙面上。迅速用左手拇指和食指捏其双耳间颈背部皮肤，无名指、小指和掌心夹其背部颈背部皮肤，无名指、小指和掌心夹其背部皮肤和尾部，便可将小鼠牢固捉持皮肤和尾部，便可将小鼠牢固捉持 小鼠的捉持小鼠的捉持双手法：右手提鼠尾，放在鼠笼盖或粗糙面上，向后方轻拉鼠尾，使25o单手法：小鼠置于笼盖上，先用左手食指和单手法：小鼠置于笼盖上，先用左手食指和拇指抓住鼠尾，后手掌尺侧和小指夹住鼠尾，拇指抓住鼠尾，后手掌尺侧和小指夹住鼠尾，然后左手拇指与食指捏住颈部皮肤然后左手拇指与食指捏住颈部皮肤 单手法：小鼠置于笼盖上，先用左手食指和拇指抓住鼠尾，后手掌尺26大鼠的捉持大鼠的捉持o捉持和固定方法基本同小鼠，无经验者可戴捉持和固定方法基本同小鼠，无经验者可戴上防护手套，并应动作轻柔上防护手套，并应动作轻柔o用右手捉住鼠尾，放在鼠笼盖上，向后轻拉用右手捉住鼠尾，放在鼠笼盖上，向后轻拉鼠尾；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠鼠尾；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可背皮肤即可 大鼠的捉持捉持和固定方法基本同小鼠，无经验者可戴上防护手套，27兔的捉持兔的捉持o用一手抓住家兔的项部皮肤，将兔提起，另用一手抓住家兔的项部皮肤，将兔提起，另一手托其臀部，使兔呈坐式姿势。一手托其臀部，使兔呈坐式姿势。兔的捉持用一手抓住家兔的项部皮肤，将兔提起，另一手托其臀部，28常用的给药方法常用的给药方法常用的给药方法29小鼠的给药方法小鼠的给药方法o灌胃（灌胃（ig）：）：将小鼠固定后，将小鼠固定后，使颈部拉直，右手持装有灌使颈部拉直，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角插胃针头的注射器，自口角插入口腔，压其头部，使口腔入口腔，压其头部，使口腔与食道成一直线，沿上腭壁与食道成一直线，沿上腭壁向鼠口腔的后下方轻轻插入向鼠口腔的后下方轻轻插入食道。如遇阻力，可将针头食道。如遇阻力，可将针头抽出再插，以免刺破食管或抽出再插，以免刺破食管或误入气管。一般给药量为误入气管。一般给药量为0.10.3ml/10g体重体重 小鼠的给药方法灌胃（ig）：将小鼠固定后，使颈部拉直，右手持30o皮下注射（皮下注射（sc）：）：常在背部皮下。轻轻捏起背部皮常在背部皮下。轻轻捏起背部皮肤，将注射针头刺入皮下，稍稍摆动针头，若容易肤，将注射针头刺入皮下，稍稍摆动针头，若容易摆动则表明针尖位于皮下。然后注入药液。一般给摆动则表明针尖位于皮下。然后注入药液。一般给药量为药量为0.050.2ml/10g体重体重 皮下注射（sc）：常在背部皮下。轻轻捏起背部皮肤，将注射针头31o腹腔注射（腹腔注射（ip）：）：左手固左手固定动物，右手持注射器，定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈从下腹部外侧，呈45 角刺入腹腔，进针约角刺入腹腔，进针约35mm，一般给药量为，一般给药量为0.10.3ml/10g体重体重 腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，32大鼠的给药方法大鼠的给药方法方法基本同小鼠。给药容量一般为：方法基本同小鼠。给药容量一般为：o灌胃灌胃12ml/100go皮下注射皮下注射0.51ml/100go腹腔注射腹腔注射0.51ml/100go肌内注射肌内注射0.10.2ml/100go尾静脉注射尾静脉注射0.20.5ml/100g大鼠的给药方法方法基本同小鼠。给药容量一般为：33兔的给药方法兔的给药方法o灌胃法：灌胃法：将兔置于固定箱内，用开口器插入兔口，使兔将兔置于固定箱内，用开口器插入兔口，使兔舌伸直并固定之。另一人将胃管（可用导尿管代替）从舌伸直并固定之。另一人将胃管（可用导尿管代替）从开口器中央孔插入口内，再慢慢插入食管和胃，深开口器中央孔插入口内，再慢慢插入食管和胃，深1518cm。插管时感觉顺利，动物不挣扎也无呼吸困难出。插管时感觉顺利，动物不挣扎也无呼吸困难出现，表示导尿管在胃内。将导尿管外端插入水中，如有现，表示导尿管在胃内。将导尿管外端插入水中，如有气泡吹出，表示已误入气管内，应拔出重插。如未见气气泡吹出，表示已误入气管内，应拔出重插。如未见气泡出现即证实在胃内。然后将药液注入。灌药量一般为泡出现即证实在胃内。然后将药液注入。灌药量一般为10ml/kg体重体重 兔的给药方法灌胃法：将兔置于固定箱内，用开口器插入兔口，使兔34o耳缘静脉注射：耳缘静脉注射：将家兔置于固将家兔置于固定箱内，沿耳后缘拔去兔毛，定箱内，沿耳后缘拔去兔毛，用干棉球擦兔耳或用手指轻弹，用干棉球擦兔耳或用手指轻弹，使耳缘静脉扩张。使耳缘静脉扩张。以手捏在以手捏在耳根部压住静脉，使其充血，耳根部压住静脉，使其充血，然后进针，见回血后注入药液。然后进针，见回血后注入药液。推注时如有阻力，局部肿胀变推注时如有阻力，局部肿胀变白，表明针头不在血管内，须白，表明针头不在血管内，须重新穿刺。注射量一般为重新穿刺。注射量一般为 0.22mlkg耳缘静脉注射：将家兔置于固定箱内，沿耳后缘拔去兔毛，用干棉球355.实验动物给药量的计算实验动物给药量的计算o药物浓度一般用百分浓度（药物浓度一般用百分浓度（%）（）（w/v）o给药剂量一般按给药剂量一般按mg/kg(或或g/kg)计算。为方计算。为方便，大鼠和豚鼠可按每便，大鼠和豚鼠可按每100g计算，小鼠可按计算，小鼠可按每每10g计算计算o给药给药剂量剂量=药物药物浓度浓度给药给药体积体积o已知动物体重，给药剂量、药物浓度和给药已知动物体重，给药剂量、药物浓度和给药体积（体积（ml）中任意一个都可由其余两个推算）中任意一个都可由其余两个推算而得而得5.实验动物给药量的计算药物浓度一般用百分浓度（%）（w/36例题例题小鼠体重小鼠体重22g，腹腔注射盐酸吗啡，腹腔注射盐酸吗啡10mg/kg,药物浓度为药物浓度为0.1%，应注射多少毫升，应注射多少毫升?o药物浓度：药物浓度：0.1%=0.1g/100ml=100mg/100ml=1mg/mlo给药剂量：给药剂量：10mg/kgo22g小鼠药量：小鼠药量：10mg/kg 0.022kg0.22mg 0.22mg 1mg/ml=0.22ml例题37 溶液溶液PH值值对某些药物吸收速率的影响对某些药物吸收速率的影响实验二 溶液PH值实验二38【目的目的】通过对不同通过对不同PH值的阿托品溶液滴眼后值的阿托品溶液滴眼后作用快慢的比较，了解溶液的作用快慢的比较，了解溶液的PH值对值对弱碱（或弱酸）性药物穿透生物膜速率的的弱碱（或弱酸）性药物穿透生物膜速率的的影响影响【动物动物】家兔家兔1只只【药品药品】n1%硫酸阿托品（硫酸阿托品（PH9）n1%硫酸阿托品硫酸阿托品（PH5）【器材器材】兔固定箱，滴管，测瞳尺，手电筒兔固定箱，滴管，测瞳尺，手电筒【目的】通过对不同PH值的阿托品溶液滴眼后39阿托品阿托品可阻断瞳孔扩约肌的可阻断瞳孔扩约肌的M M 受体，使受体，使扩约肌松弛，导致瞳孔散大扩约肌松弛，导致瞳孔散大oM-胆碱受体激动剂胆碱受体激动剂瞳孔括约肌收缩，瞳孔括约肌收缩，引起缩瞳引起缩瞳阿托品可阻断瞳孔扩约肌的M 受体，使扩约肌松弛，导致瞳孔40阿托品是一个生物碱（弱碱性）阿托品是一个生物碱（弱碱性）BH+BH+根据根据Handerson-Hasselbalch公式公式 BH+B 10 PKa PH阿托品是一个生物碱（弱碱性）BH+41方法方法o1.取兔取兔1只，置兔固定箱内，给药前于适度只，置兔固定箱内，给药前于适度的光照下，用测瞳尺测量两眼瞳孔的大小的光照下，用测瞳尺测量两眼瞳孔的大小（以（以mm表示）。另用手电筒光照试验对光表示）。另用手电筒光照试验对光反射，即用闪射光照射兔眼，如瞳孔随光照反射，即用闪射光照射兔眼，如瞳孔随光照而缩小，即为对光反射阳性，否则为阴性而缩小，即为对光反射阳性，否则为阴性方法1.取兔1只，置兔固定箱内，给药前于适度的光照下，用42给药前给药前 1min 2min 3min 4min 5min瞳孔直径（瞳孔直径（mm）2.2.剪去兔眼的睫毛，在其左右眼结膜囊内分别剪去兔眼的睫毛，在其左右眼结膜囊内分别滴药，观察两眼瞳孔变化，用直尺测量直径并滴药，观察两眼瞳孔变化，用直尺测量直径并测对光反射，直至两眼瞳孔不在扩大，对光反测对光反射，直至两眼瞳孔不在扩大，对光反射消失，结果记入下表射消失，结果记入下表对光反射对光反射给药前 1min 2min 3min 443注意事项注意事项o1动物瞳孔大小可因光强不同而变化，故比较给动物瞳孔大小可因光强不同而变化，故比较给药前后瞳孔变化，要在同一光强条件下比较药前后瞳孔变化，要在同一光强条件下比较o2滴药液时，将兔下眼睑拉开，使其成杯状，并滴药液时，将兔下眼睑拉开，使其成杯状，并在结膜囊内保留在结膜囊内保留30秒，再将手放开秒，再将手放开o3测瞳时不能刺激角膜，测量角度须前后一致，测瞳时不能刺激角膜，测量角度须前后一致，否则将影响结果的精准度否则将影响结果的精准度o4观察对光反射只能用闪射灯光观察对光反射只能用闪射灯光o5.两药液的作用差异在滴药后两药液的作用差异在滴药后25min最明显最明显注意事项1动物瞳孔大小可因光强不同而变化，故比较给药前后瞳44p经常不断地学习,你就什么都知道。你知道得越多,你就越有力量pStudyConstantly,AndYouWillKnowEverything.TheMoreYouKnow,TheMorePowerfulYouWillBe写在最后经常不断地学习,你就什么都知道。你知道得越多,你就越有力量写45感谢聆听不足之处请大家批评指导Please Criticize And Guide The Shortcomings结束语讲师：XXXXXX XX年XX月XX日 感谢聆听结束语讲师：XXXXXX 46