实验动物学实验报告（共篇）

实验动物学实验报告（共篇）实验动物学实验报告（共 9 篇） 实验动物学实验报告 实验一大、小鼠的基本实验操作一、实验目的:通过实际操作，掌握大、小鼠的一般操作方法，包 括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、给药、采血。二、实验动物：昆明小鼠 4 只（2 雌 2 雄）、大鼠 4 只（2 雌 2 雄）、灌胃器 2 个、注射器 4 个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定 器 1 个、大鼠固定器 1 个。三、实验步骤1、抓取和固定1.1 抓取：左手抓小鼠的尾根部1.2 固定：左手抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后 拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指 和无名指将尾巴固定在手掌面。1.3 同样操作将大鼠抓取和固定2、性别鉴定：2.1 抓取和固定小鼠2.2 观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。雄性：距离长， 毛发密（和其他部位一样）；雌性：距离短，毛发稀疏。2.3 同样鉴别方法，重复鉴别大鼠。3. 给药3.1 灌胃法3.1.1 按正确方法用左手抓取和固定小鼠，使腹部朝上，颈部拉直。3.1.2 固定后，右手持持接灌胃针的注射器吸取药液（或事先将药 液吸好），将针头从口角插入口腔内，然后用灌胃针头压其头部， 使口腔与食管成一直线，再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入，转动针头 刺激动物吞咽，然后沿咽后壁慢慢插入食道。3.1.3 当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射 器活塞，感觉有负压，此时可将药液灌入。3.1.3 用大鼠重复同样操作3.2 注射给药3.2.1 皮下注射3.2.1.1 用左手拇指和食指轻轻提起动物颈后肩胛间皮肤，3.2.1.2 右手持注射器，使针头水平刺入皮下，针头能自由拨动无 牵阻，推送药液时注射部位隆起。拨针时，以手指捏住针刺部位 3.2.1.3 用大鼠重复同样操作3.2.2 腹腔注射3.2.2.1 以左手固定小鼠，使腹部向上，3.2.2.2 右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前， 再将注射器沿45 角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回 血或尿液，即可注入药液。3.2.2.3 用大鼠重复同样操作3.2.3 尾静脉注射3.2.3.1 先将动物固定在暴露尾部的固定器内，3.2.3.2用 75酒精棉球反复擦拭尾部使血管扩张，3.2.3.3 以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，用中指从下面托起鼠， 右手持注射器，使针头尽量采取与尾部平行的角度进针，从尾末端处 刺入。3.2.3.4 注入药液，无阻力，表示针头已进入静脉，注射后把尾部 向注射侧弯曲，或拔针后随即以干棉球按住注射部位以止血。 3.2.3.4 用大鼠重复同样操作4 取血4.1 内眦取血：4.1.1 左手固定小鼠，食指和拇指轻轻压迫颈部两侧，使眶后动静 脉充血。4.1.2 右手持毛细采血管，以 45 度从内眼刺入，并向下旋转，感 觉刺入血管后，再向外边退边吸，使血液顺承血管自由流入小管中，4.1.3当得到0.5ml血量后，放松加于颈部的压力，并拔出采血器， 以防穿刺孔出血4.1.4用大鼠重复同样操作五、实验讨论1、小鼠抓取的感受：小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。大鼠抓取 方法基本同小鼠，抓大鼠时若操作者不熟练，或者大鼠特别凶猛，操 作者最好戴上防护手套（帆布或硬皮质均可）。如若是灌胃、腹腔注射、 肌肉和皮下注射时，可采用与小鼠相同的手法2、小鼠尾静脉注射感受：2.1 尾静脉注射时，可用 4550 度的温水浸润半分钟或用酒精擦 拭，可使血管扩张，同时也可软化表皮角质。2.2 如反复注入，应尽可能从尾末端开始，以后向尾根部方向移动 注射先远后尽，不要一开始就从尾根部，失败了无法选取注射部位； 再次，进血管后注意保持稳定，针尖很容易刺穿血管的。2.3 尾静脉就在尾巴的正左右两边，先用酒精用力擦，可以去掉部 分角质，然后按住近心端让充血，就很容易看到了。3.灌胃3.1 针头插入食道过程中，若动物挣扎厉害，应退出后灌胃针，待 动物安静后重新插入。切不可强行插入，以免损伤食道或误入气管导 致动物死亡。3.2 当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器 活塞，感觉有负压说明灌胃针未插入气管，此时可将药液灌入。篇二： 实验动物学实验报告实验动物学实验报告一、实验动物：小鼠二、操作流程：抓取，固定，编号，给药，取血，麻醉，绝育， 解剖。三、具体操作1、抓取：抓取小鼠时，右手抓住小鼠尾巴，不要过于用力，以免 惊吓小鼠。左手从小鼠身体后部向前抓（以免小鼠向后缩咬伤自己）， 抓住小鼠颈部。固定住小鼠后，将小鼠皮肤往上抓，尽量将小鼠背部 皮肤抓住。左手将小鼠腹部朝向自己，把小鼠尾巴用左手无名指和小 指夹住，这时小鼠腹部皮肤紧绷，不能动弹。2、固定：通常使用固定器进行固定。将固定器拧开后，抓住小鼠 尾巴，使其钻入固定器中，再将拧下的固定器部分装好，使小鼠尾部 露出，再将可旋转的铁片固定住即可进行后续实验。3编号：编号方式有两种：剪脚趾编号：把小鼠腹面朝上，在 下的脚趾从左至右依次编为 110 号，剪 10 号脚趾加 19 号脚趾依 次编为 1119号，在上的脚趾依次编为20,30,40,50,60,70,80,90号， 其余编号与1119号类似。打耳钉编号：耳钉上均有唯一编号，通 过使用耳钉钳将耳钉打在小鼠耳朵上即可。实验时通常使用的是第一 种方式进行编号，第二种编号通常用于需要长距离运输的动物。4、给药：常用的给药方式有： 口服给药：即灌胃。将注射器装入药物溶液，装上灌胃针（灌 胃针有直头和弯头两种，区别不大）。如上所述，抓取小鼠后，使其 头部朝上，尽量呈一直线，取灌胃针，从小鼠嘴角一侧缓缓插入（保持刻度在自己能看到的位置），顺着小鼠口腔食道的弧度 让小鼠将针咽入，灌胃过程中如果遇到阻碍一定要及时拔出灌胃针， 不可强行灌胃以免伤及小鼠食道以及肺部。灌胃针顺利进入后基本与 小鼠身体呈一条直线，注入适量体积后再顺着食道缓缓取出灌胃针。 静脉注射：小鼠尾部有3条静脉和1条动脉，3条静脉非别位于 背部，及两侧。静脉注射时一般选取两侧静脉，因为其相对于背部静 脉更为清晰饱满。将小鼠固定后，用酒精擦拭其尾部静脉，使其充血， 以便注射。之后使注射器针孔处朝上，针与尾部呈约30扎入尾部后向 上轻挑，再向内扎入部分，此过程应该比较顺畅，没有阻碍，若阻碍 较大则有可能扎入到了皮肤中。扎入后将活塞向后回抽一点可见到有 血回流，则说明成功扎入静脉当中，注射适当体积后迅速拔针，用酒精进行消毒。5、取血：有断尾取血法和眼眶取血法两种。本次实验使用的是眼 眶取血法。抓取小鼠，固定其头部用手指将其上下眼睑分开，露出其 眼球并且不能闭上。用玻璃毛细管从其上眼角处扎入眼球后方毛细血 管从，使血液顺着毛细管留下，取血完成后快速将毛细管取下。6、麻醉：抓取老鼠，使其头部朝下，使其腹部脏器向胸腔靠拢， 露出腹部空腔，以免刺伤脏器。将注射器竖直扎入靠近后腿部腹腔， 刺入之后稍微向前倾斜但不要向前刺入，一般注入 0.5mL 麻醉剂即可 随后拔出针，方向小鼠，等待几分钟后即可麻醉。7、绝育：绝育手术是通过剪除雌鼠卵巢或雄鼠输精管来实现的。 将麻醉的雌鼠背面朝上，从其胸腔和尾部之间向下三分之一处剪开一 个小口，用镊子将其卵巢取出，上面呈现红色斑点的部分即为卵巢， 用剪刀将这一部分剪除，然后用缝合针线将其缝合，缝合方法为将针 穿过后，将线缠绕镊子两圈再逆时针缠绕两圈，再重复缠绕一遍，将镊子夹住线头把缠绕的线移至线头系紧 即可（缝合过程全程用镊子和剪刀操作），里面肌肉层以及外面皮层 均需缝合。雄鼠则从外生殖器向上1-2cm处剪开小口，用镊子在其中 找出输精管（较细长的乳白色小管），尽量多减掉一些，以免其长长 愈合，以上述方法缝合伤口即可。9、解剖：以颈椎脱臼法处死小鼠，使其腹面朝上。用镊子将其腹 部皮肤夹起，然后用剪刀剪开，观察各个器官所在位置和形态，解剖 完的小鼠放入尸体袋中。篇三：复旦大学实验动物学实验报告复旦大学实验动物学实验报告实验报告一小鼠的一般技术操作一、实验目的和要求：通过实际操作，掌握小鼠实验的一般操作方法，包括动物的抓取 和保定、性别鉴定、编号、给药、麻醉、采血、处死、解剖等方法。二、实验基本步骤：（一）抓取和保定 先用右手将小鼠的尾巴提起，至于鼠笼或粗糙的平面上，当小鼠 向前挣扎行进时，再用左手的拇指和示指捏住小鼠两耳后颈部皮肤， 翻转小鼠至于掌心，拉直后肢。以小指拉住小鼠尾巴即可。在一些特 殊的实验中，如进行尾静脉注射时，可使用专门的小鼠固定器进行保 定。（二）性别鉴定 将小鼠抓取后，观察其肛门及生殖器之间的距离，距离远的为雄 性，距离近的为雌性。另外翻转小鼠观察生殖器附近，性成熟的雄性 小鼠的睾丸降至阴囊内，会有明显的突起；雌性小鼠的肛门至会阴处 有一条无毛覆盖的细线。（三）编号方法 常用的有染色法、耳缘打孔法、烙印法、挂牌法。此外还有断趾 法、剪尾法、被毛剪号法、笼子编号法等。在本次实验中，我们小组使用的是染色法。（四）去毛方法 常用的有拔毛法、剪毛法、剃毛法、脱毛法。（五）给药方法 常用的有经口灌胃法、经呼吸道吸入、经皮肤吸收和注射给药法。1经口给药法（1）灌胃法：左手固定小鼠，右手持灌胃器，将灌胃针从小鼠的 一侧犬齿缺失处插入口中，灌胃针竖起靠向口腔后壁，使小鼠消化道成直线，沿咽喉壁缓慢插入食管，使其前段到达膈肌位置， 灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出， 以免损伤、穿破食管或误入气管。（2）口服法 在本次实验中，我们小组使用的是灌胃法。2. 注射给药法（1）皮下注射（2）肌肉注射（3）腹腔注射（4）静脉注射 在本次实验中，我们使用的是皮下注射、腹腔注射、静脉注射。（六）采血方法1. 断头取血2. 眼眶后静脉丛穿刺采血3. 尾静脉切割采血法4. 摘眼球采血法5. 心脏采血在本次实验中，我们小组使用的是眼眶后静脉丛穿刺采血、尾静 脉切割采血、摘眼球采血法、心脏采血。（七）麻醉方法1. 常用局部麻醉剂：普鲁卡因、利多卡因2. 常用全身麻醉剂：乙醚、苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠、 巴比妥钠、氨基甲酸乙酯。在本次实验中，对小鼠采用腹腔注射麻醉，方法与腹腔注射给药 一样,麻醉剂是2%水合氯醛,剂量为400mg/kg ,注射量为 0.5ml/25g。（八）皮肤移植在本次实验中，在小鼠尾巴上切取长8mm，宽3mm的皮肤，切 取效果不好。（九）处死方法1. 颈椎脱臼法2.断头法3. 击打法4. 急性大出血法5. 药物致死法 在本次实验中，我们小组采用的是颈椎脱臼法。（十）解剖方法 解剖步骤如下：动物尸体取仰卧位，将四肢固定，用水浸湿被毛。 从下颌中央开始到耻骨联合正中垂直切口，用骨剪把左右肋骨剪断后， 将胸骨向前下方翻开，即可暴露胸、腹腔。按胸腔、腹腔、颅腔的次 序观察各脏器的位置、形状及彼此相互关系，然后分别取下。先在胸 腔入口处切断食管和气管，将心和肺一起取出；再依次摘除腹部脏器 脾、肝、肾上腺、肾、胃、肠和盆腔器官，分别进行各脏器的检查。在本次实验中，我们小组解剖了一只雄性小鼠和一只雌性小鼠。 在观察各个脏器之后，着重又观察了胸腺（在胸腔入口处，乳白色， 由左右 2 叶组成）、胰腺（分散在十二指肠、胃底和脾门处，色淡红， 不规则，似脂肪组织）、肾上腺（位于肾脏上级，白色，周围有较多 脂肪组织包绕）、雌性小鼠的子宫（呈“Y”型，为双角子宫，分为子 宫角、子宫体、子宫颈）、卵巢（位于双侧肾脏下缘附近，粉红色， 为系膜包绕，不与子宫想通）、雄性小鼠的睾丸（椭圆形白色物质）、 凝固腺（附着于精液腺内侧，呈半透明的半月形器官）。实验报告二兔的一般操作技术一、目的和要求 通过实际操作，基本掌握兔的抓取和保定、性别鉴定、灌胃、耳缘静脉采血注射、解剖、处死等操作技术。二、实验基本步骤：（一）抓取和保定1. 抓取：轻轻打开笼门，勿使兔受惊，当兔安静下来时，用手伸 入笼内，从头前部阻。它跑动，用右手把两耳轻轻压于手心内，抓住 颈背部皮肤提起兔，然后用左手托住臀部，兔身的重量大部分落在左 手掌上。2. 保定：将兔置于实验台上，待兔安静后。双手各抓一侧兔前肢， 肘部夹住兔后肢后向胸腹部靠拢，展开兔前肢，暴露兔雄部。（二）性别鉴定使兔下腹部朝向观察者，将生殖器周围的皮肤拨开，可见一圆孔， 里面暴露出阴茎，则为雄性，反之为雌性。（三）给药方法1.灌胃2. 耳缘静脉注射 在本次实验中，我们小组采用的是灌胃给药法，由于没有固定器 篇四：实验动物学报告1医学实验动物学实验报告（一） 实验名称：小鼠的一般操作实验日期： 姓名：学号：专业：一、实验目的和要求 掌握小鼠实验的一般操作：动物的抓取和保定，性别鉴定，编号， 给药，麻醉，采血，处死，解剖等。二、实验准备1、动物：昆明小鼠，雌雄各2只2、器械：毛笔，解剖剪，解剖镊，眼科剪，眼科镊，解剖板，灌 胃针，注射器，头皮针，干棉球及酒精棉球，20ul采血针。3、药品：苦味酸， 0.9%生理盐水及2%水合氯醛三、实验步骤1、抓取和保定 右手将小鼠尾巴提起，置于粗糙的平面上，此时小鼠向前挣扎， 用左手拇指和食指捏住小鼠颈背部皮肤，翻转小鼠，其背部置于掌心， 小指压住小鼠尾巴2、性别鉴定 小鼠抓取后翻转，观察肛门与生殖器之间的距离，距离远者为雄 性，近者为雌性。雄性小鼠睾丸降至阴囊内，生殖器有明显突起；雌 性小鼠的肛门至会阴处为无皮毛覆盖的细线。3、编号 用苦味酸（黄色）的酒精饱和溶液逆着小鼠的毛染色（可维 持 12 个月）不同的颜色部位代表不同的标号。一般习惯上的部位顺序为：1左前肢。2左腹部，3左后肢，4 头颈部，5 背部，6 尾根部，7 右腹部 9 右后肢。4、给药（1）灌胃 左手抓取和固定小鼠，特别是其头颈部，右手持灌胃针，用灌胃 针轻轻压其头部，尽量使其口腔和食道成一条直线再将灌胃针沿上腭壁轻 轻进入食道，当灌胃针进入约 3cm 左右时即到达胃内，向胃内注射 0.9% 生理盐水后轻轻抽出灌胃针，小鼠每次最大灌胃量为0.5ml。（2）腹腔给药左手抓取和固定小鼠，右手持注射器，从左下腹部腹股沟上约0.5cm，腹中线旁外 1cm 进针，进针时腹部平面形成 45 度，进针深度约 1cm （3）尾静脉注射将小鼠放入固定的小笼内，尾巴滞留在外，消毒尾部，并挤压尾根部用左右拇指和食 医学实验动物学实验报告（一） 指控制小鼠尾巴角度。右手持注射器，使其与尾两侧的静脉平行，从尾下 1/4 处进针，将注射器外套置于拇指与中 指交叉处，保持针头刺入点、血管、注射器成一条直线。向充盈的尾静脉刺入35mm，食指及中指夹住注射器外套，拇指推注射器，将0.9%生理盐水按一定速度推入。注射时若出现 隆起的白色皮丘，说明针头未注入血管，应重 新向尾巴根部移动进针注射。5、采血眼眶后静脉丛穿刺采血：左手抓取并保定小鼠，使右眼后侧皮肤 绷紧，使眼球暴露突出，右手将针头从内侧眼角转动插入，由鼻 侧眼眶壁平行向前推动，有突破感，血液流出。取血后，拔出针头， 用干棉球压迫眼眶止血。6、麻醉采 用 小 鼠 腹 腔注射麻醉 ， 麻 醉 剂 为 2%水合 氯醛 ， 用 量 为 400mg/kg ， 注 射 量 为 0.5ml/25g 。 本 组 小 鼠 体 重 分 别 为 24.6g 23.5g 23.2g 23.5g。7、处死 小鼠处死一般采用引颈法。将教书置于一处其可抓住的地方，左 手拇指和食指用力向下按住小鼠头部，右手抓住小鼠尾部用力向上向 后拉，将脊髓拉断，小鼠即刻死亡。8、解剖固定小鼠，以下腹部最低点起始， V 字开口，沿中线剪开皮肤至 剑突，再剪开腹膜，暴露腹盆腔器官。观察腹腔内器官（肝脏、胆囊、 脾脏、胰腺、胃、肠道、肾脏、输尿管、膀胱、生殖器等）。小鼠解 剖学特点：1、小鼠腹腔内肝脏、胆囊、胃、肠、肾、膀胱、脾等。肝脏分为 左、右、中、尾四叶，胆囊藏在肝分叶的深层，较透明；胰腺为弥散状，分散在 十二指肠、胃底及脾门处，色淡红，似脂肪组织。推开肠管可见肾脏， 左肾位置偏下被脾脏覆盖，右肾偏上被肝脏遮盖，肾上腺位于肾上极， 白色，周围有较多脂肪组织包绕。2、小鼠胸腔有气管、肺、心脏和胸腺。肺脏有4叶组成，剪开胸 部皮肤和肋骨，可见两侧肺脏和中间心脏，向上有气管。甲状腺位于气管旁，深 红色。3、雌鼠生殖器官有卵巢、输卵管、子宫，阴道等。其子宫为“Y 型（双角子宫），分为子宫角、子宫体、子宫颈。沿两个角向上寻找卵巢，位于双 侧肾脏下缘附近。卵巢被系膜包绕，不与腹腔相通。4、雄鼠的生殖器有睾丸、附睾、副性腺（如凝固腺）、输精管等 挤压雄鼠阴囊，腹腔内可见两椭圆形白色物质，即为睾丸。凝固腺附着于精液腺 内侧，是半透明的半月形器官。副性腺分泌物有营养精子、形成阴栓 等作用。四、实验注意事项： 医学实验动物学实验报告（一） 1、抓取和保定小鼠时多抓一些皮肤更易固定小鼠。并用小时固定 小鼠后肢及尾巴，防止其挣扎影响操作。2、用苦味酸涂染小鼠毛法简便、清晰，适用于短期实验，如要做 长期试验，为避免褪色，可每隔 23 周重染一次。3、经口灌胃时，插入灌胃针是不可强行差=插，可退回后在尝 试插入，若小鼠强烈挣 扎，提示插入位置不正确，需拔出重插，否则可将药物灌入气管 内，造成小鼠死亡。4、腹腔进针注射时，针头不能插入太深，选择进针的地方应该尽 量靠近下腹部，尽可能避免刺伤肝脏、脾和膀胱。推注射器前可先回抽，确认无血液 及肠内容物后再注射。5、尾静脉注射时，选择起始进针位置应靠近尾尖，进针角度应该 30 度，防止血管对穿。进针后由于小鼠血管较细，回抽也不一定有血，主要通过观 察推药时血管的颜色和尾巴是否水肿出现。6、小鼠麻醉时：存在个体差异，对麻药量的耐受性也不同，应注 射后观察小鼠的反应，如麻醉药剂量不足，理论上补1/3 的原剂量。7、处死小鼠时：右手用力应从小逐渐增大，避免突然用力，以免 小鼠尾拉断而脊髓未断。右手除向后用力还应该部分向上用力，使小鼠的身体和头部 成一定的角度，更容易处死。五、实验讨论1、给药途径有经口灌胃法、经呼吸道吸入、经皮肤吸收和注射给 药法等，选择歌谣途径的依据：（1）根据药物的性质悬着给药途径；如有刺激性的药物不适用于 皮下、肌肉和腹腔注射，只能经口给药或静脉注射，如在消化道内破坏或吸收 不好的药物应该注射给药。（2）根据实验要求选择给药途径；如要求药物作用出现快，可用 注射给药。如要药物作用相对延长，可注射油剂。若为雾状药物或毒物则需要 通过呼吸道吸入。有些毒物易经皮肤吸收，可采用皮肤给药。（3）根据剂型选择给药途径；水溶液可以采用任何给药途径，油 剂溶液可经口给药，也可通过肌肉注射给药。2、尾静脉注射时，可将小鼠尾用 4550 度的温水浸润半分钟或 用酒精擦拭，可使血管扩张，同时也可软化表皮角质。以左手拇指和食指夹住鼠尾，使 静脉充盈，中指帮助无名指和小指捏住鼠尾末梢，右手持注射器，针 头与静脉夹角一般30度，从距尾尖2 - 3厘米处进针，此处皮薄易进 入，先抽回血，见到血后再缓慢注入少量溶液，如无阻力，表示针头 已进入静脉，可继续注入。一般推注速度为0.05 - 0.10ml/秒,-次注 入量为0.05 - 0.25ml/10g体重，单次小鼠尾静脉注射的剂量不易超过 0.4ml，大剂量迅速推注容易造成小鼠超负载性死亡。如反复注入，应尽可能从尾末端开始，以后向尾根部方向移 动注射。篇五：实验动物学报告 2 医学实验动物学实验报告（二） 实验名称：大鼠的一般操作实验日期： 姓名：学号：专业：一、实验目的和要求 掌握大鼠的一般操作方法:抓取和保定、性别鉴别、给药、采血、 处死、解剖等。二、实验准备1动物：SD大鼠，雌雄各一只。2、器械：毛笔，解剖剪，解剖镊、眼科剪，眼科镊，解剖板，灌 胃针，头皮针，注射器，干棉球、酒精棉球，50ul采血针3、药物：苦无酸，0.9%生理盐水及 10%水合氯醛三、实验操作1、抓取和保定 将大鼠放置于桌面，右手抓取其尾部，左手放在大鼠背部，左手 食指和中指使其颈部保定，左手半握状，大拇指压住大鼠右前肢，四 指压住大鼠左前肢，将大鼠翻转。2、性别鉴定 抓住大鼠后，观察动物肛门与生殖器之间的距离，距离远的为雄